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抗氧化酶活性等测定方法

叶绿体得提取一、试剂配置1、PBS提取液:每L水依次加入MES(195.2×0。

05=9、76g)、山梨糖醇(0。

33×182。

2=60。

126g)、NaCl(0、010×58.5=0、585g)、MgCl(0.002×95=0、19g)、EDTA(292、25×0.002=0、5845g)、KH2PO4(200×0.0005=0、1g);使用时加入ASA—Na(198。

1×0、002=0、3962g);2、悬浮液:将PBS提取液中得MES换为238。

3×0.05=11、915g得HEPES(238、3×0。

05=11。

915g);3、80%Percol:80ml原液+20ml水;40%Percol:40ml原液+60ml水;实际配制:PBS提取液2000ml(3个处理*2个品种*3个重复*20ml*3次=1080ml),悬浮液100ml(3个处理*2个品种*3个重复*1ml*3次=54ml);80%Percol 200ml;40%Percol 200ml。

(3个处理*2个品种*3个重复*3ml*3次=162ml)二、提取步骤1、10g鲜样加20ml提取PBS(50mM MES PH6、1,含0、33M山梨糖醇,10mM NaCl,2mMMgCl2,2mM EDTA,0.5 mMKH2PO4,2mM ASA—Na,ASA—Na使用前现配现加)2、快速研磨,使叶片碎成绿豆粒大小,4层纱布过滤,去除残渣(注意过滤时不可用力挤压,以免叶绿体膜破碎)3、滤液2000g 3min,小心倒出上清液,将离心管放入离心机后,使离心机得加速很快上升到预定值(水平转头,加速度调到9),约经30s后很快使其下降停止,整个离心持续大约2—3min左右完成;4、沉淀用1ml提取液漂洗表面悬浮物;5、用1ml悬浮液(50mM HEPES pH7。

6,含0、33mM山梨糖醇,10mM NaCl,2mM MgCl2,2mM EDTA,0。

5mMKH2PO4,2mM ASA-Na,ASA-Na使用前现配现加)将沉淀悬浮,在分散叶绿体时宜用毛笔轻轻刷,或者用手握住离心管在冰块之间搅动,使叶绿体由于震动分散开来,不要用棉球吸滤,以防被膜压破。

叶绿体悬浮时要浓点,含叶绿素2mg、ml-1以上,这样有利于保持活性。

6、2000g 1min;7、沉淀再用悬浮液悬浮;(悬浮液同5,可以不做)8、用Percol试剂进行梯度离心(将3ml含有80%Percol(原液按100%算)铺在10ml离心管下层,再把3ml 40%Percol铺在离心管中层,然后将1ml叶绿体悬浮液轻轻铺在离心管上层)1500g2-3min(用水平离心头得离心机,离心机加速要缓慢上升,加速度调到1),下降也要缓慢下降,否则会破碎Percol得浓度梯度层得形成,取出会瞧到3层绿色带,最上层为破碎得叶绿体,沉在地层得为粗颗粒,40-80%得Percol 之间得界面有一层绿色层为完整得叶绿体;9、小心吸出,转移到悬浮介质中,使叶绿体浓度达到1mg.ml—1;(计算:取叶绿体悬浮液0.1ml,加4.9 ml80%得丙酮,摇匀后于1000g离心2min,上清液置于1cm得比色杯,在625nm上比色,按照公式计算:OD6×50/34.5=叶绿素mg/ml)25nm10、测定叶绿体得完整性,完整率达到85-95%;参考:TakedaK,Otaubo T,Konda N. Participation of hydrogen peroxide inthe inactivationof Calvin—cycle SH enzyme inso2—furmugated spinachleaves。

Plant and cell Physiology,1982,23:1009—1018。

取上述制备得完整叶绿体进行如下测定:1、用50mM PBS(保护酶或其她测定项目得缓冲液)稀释2-5倍,用于测定SOD、POD、CAT、APX;2、用冷丙酮稀释2倍,取0。

5ML提取液用于测定H2O2;(本试验中用0。

2mol/L HClO4稀释)3、用5%得TCA稀释2-5倍,取1。

5ml用于测定MDA;4、用乙醇:丙酮:水=4。

5:4。

5:1稀释,用于测定叶绿素;抗氧化酶(SOD、POD、CAT、APX)活性测定方法一、超氧化物歧化酶(SOD)活性测定(氮蓝四唑光化还原法)1、试剂得配制(1)0.05mol/L磷酸缓冲液(PBS,pH7。

8):A母液:0。

2mol/L磷酸氢二钠溶液: 取Na2HPO4·12H2O(分子量358.14)71.7g;B母液:0.2mol/L磷酸二氢钠溶液:取NaH2PO4·2H2O(分子量156.01)31.2g。

分别用蒸馏水定容到1000ml。

0、05mol/L PBS(pH7、8)得配制:分别取A母液(Na2HPO4) 228。

75ml,B母液(NaH2PO4) 21.25ml,用蒸馏水定容至1000ml、参考文献:李合生主编:植物生理生化实验原理与技术。

高等教育出版社,2000:267~268。

(2)14。

5mM甲硫氨酸溶液:取2、1637g Met用磷酸缓冲液(pH7。

8)定容至1000ml。

(3)30μM EDTA-Na2溶液:取0。

001gEDTA-Na2用磷酸缓冲液定容至100ml、(4)60μM核黄素溶液:取0、0023g核黄素用磷酸缓冲液定容至100ml,避光保存。

(5)2。

25mM 氮蓝四唑(NBT)溶液:取0。

1840g NBT用PBS定容至100ml,避光保存。

(上述试剂先配好,放到4度冰箱,用之前临时按下面得方法配,然后放在4度冰箱中,不要在最上层,避免见光,第一组样品加好后拿出来加,加完后放回冰箱,第二组得样品加好后再拿出来加)酶液制备:取0。

2g(可视情况调整)样品(新鲜叶片或根系)洗净后置于预冷得研钵中,加入1。

6ml50mmol/L预冷得磷酸缓冲液(pH7、8)在冰浴上研磨成匀浆,转入离心管中在4℃、12000g下离心20min,上清液即为酶液。

2、酶活性测定(1)反应混合液配制(以60个样为准):分别取Met溶液162ml,EDTA-Na2溶液0.6ml(加得量与前面得浓度要核对),磷酸缓冲液5、4ml,NBT溶液6ml,核黄素溶液6ml,混合后摇匀;SOD反应混合液:3个处理*2个品种*3次重复*3ml*3次测定=162ml(实际配置200ml)(2)分别取3ml反应混合液与30μl(可视情况调整,最好先做一个浓度梯度,瞧加多少合适,如果量太少,最好稀释后再加,这样精确)酶液于试管中(尽可能加到试管得底部,要靠着试管壁打下去先加酶液,后加反应液,加好后摇一摇,瞧瞧试管上就是不就是有雾气,最好拿纱布把试管下边擦一下,免得雾气挡住光线照过去);(3)将试管置于光照培养箱中在4000lux光照下反应20min;(照光很重要,试管要选择相同规格得,因为不同得试管透光率就是不一样得,试管架不要选择遮光得,这个最好分组做,同时几组做相互之间会遮光,每一组一个重复,就就是每一组中都要有所有得处理,且都要有一个最大管,处理多得话,把根与叶分开做,最大管放在中间)同时做两支对照管,其中1支试管取3ml反应混合液加入30μl PBS(不加酶液)照光后测定作为最大光还原管,另1支只加缓冲液置于暗中测定时用于调零。

(4)以不照光得对照管(只有缓冲液并置于暗处)调零后,避光测OD560(出现颜色即可测定)。

(5)酶活性计算:SOD活性单位以抑制NBT光化还原50%所需酶量(测得样品值要在最大管得一半左右才合适,否则要调整酶量)为1个酶活单位(u)。

SOD总活性=[( A ck-A E )×V]/(1/2Ack×W×Vt)SOD比活力=SOD总活性/蛋白质含量SOD总活性以鲜重酶单位每克表示(u/g FW);比活力单位以酶单位每毫克蛋白表示;A ck为照光对照管得吸光度;AE为样品管得吸光度;V为样品液总体积(ml,1、6ml,加入PBS得体积);Vt为测定时得酶液用量(ml,30ul);W为样品鲜重(g,测定时应换算为叶绿体得质量mg);蛋白质含量单位为mg/g。

二、POD、CAT酶活性得测定粗酶液制备同SOD。

1、过氧化物酶(POD)活性测定(愈创木酚法)(1)试剂配制:0、2mol/L磷酸缓冲液(pH6、0):分别取A母液(Na2HPO4 ) 123ml与B母液(NaH2PO4)877m l混匀即为1000ml PBS(0。

2M,pH6、0);(2)反应混合液配制(以60个样为准):取200ml PBS(0。

2M,pH6、0),加入0.076ml液体(原液)愈创木酚(2-甲氧基酚)加热搅拌溶解,冷却后加入0。

112ml30%得H2O2,混匀后保存于冰箱中备用。

POD反应混合液:3个处理*2个品种*3次重复*3ml*3次测定=162ml(实际配置200ml, 0.076ml, 0、112ml)(3)样品测定:取3ml反应液并加入30μl酶液,以PBS为对照调零,而后测定OD470值(测定40秒)。

(边加样边测定,测定前等待5秒,动作要快,如果慢得话,要保证每个样品从加好样到开始记时得时间相差不大)(4)酶活性计算:以每min OD值变化(升高)0、01为1个酶活性单位(u)、POD=(ΔA470×Vt)/(W×Vs×0、01×t)(u/g min)ΔA470:为反应时间内吸光度得变化;W为样品鲜重(g);t为反应时间(min);Vt为提取酶液总体积(ml,(1.6ml);Vs为测定时取用酶液体积(ml,30ul)。

2、过氧化氢酶(CAT)活性测定(1)试剂配制:0、15mol/L磷酸缓冲液(pH7。

0):取A母液(Na2HPO4) 457、5 ml 与B母液(NaH2PO4) 292。

5ml混合后用蒸馏水定容至1000ml、(2)反应液配制:取200ml PBS(0、15M,pH7.0),加入0、3092ml 30%得H2O2(原液)摇匀即可。

CAT反应液:3个处理*2个品种*3次重复*3ml*3次测定=162ml(实际配置200 ml, 0、3092ml)(3)样品测定:取3ml反应液加入0.1ml(可视情况调整)酶液,以PBS为对照调零,测定OD240(紫外)(测定40s)。

(4)酶活性计算:以每min OD值减少0。

01为1个酶活性单位(u)、CAT=[ΔA240×Vt]/(W×Vs×0。

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