（3）转动转换器 换高倍镜
（4）调节细准焦 螺旋至物像清晰
5、观察整理
实验2 检测生物组织中的 糖类、脂肪、蛋白质
一、可溶性还原糖的检测：
（1）原理：还原糖 + 斐林试剂 砖红色沉淀。 （2）选材：苹果、梨、白萝卜。含糖量较高，颜色为 白色或近于白色的植物组织。 （3）检测过程：
2mL 组织 样液
模拟探究细胞表面积与体积的关系
操作步骤 1、用塑料餐刀将含酚酞的琼脂块切成三块边 长分别为3cm、2cm、1cm的正方体
2、将3块琼脂块放在烧杯内，加入NaOH 溶液，将琼脂块淹没，浸泡10min。用塑 料勺不时翻动琼脂块。
3、戴上手套，用塑料勺将琼脂块从NaOH 溶液中取出。用纸巾把它们吸干，用塑料 刀把琼脂块切成两半。仔细观察切面的颜 色变化，变成红色的部分代表NaOH扩散的 深度，测量每一块上NaOH扩散后着色的浓 度。记录测量结果
实验步骤
提取叶绿体色素
色素的提取和分 离实验
取材：取新鲜菠菜叶5g，撕去叶脉，尽量剪碎，放入研 钵。 研磨：向研钵中放入少量石英砂和碳酸钙（量约为药匙 的1/3），加入10ml无水乙醇，充分、迅速地研磨至匀 浆状态。
过滤：在小烧杯上放上4层纱布，将研磨液倒入小烧杯， 过滤制备得到滤液。
色素的提取和分 离实验
固定装置：将适量的层析液倒入试管中， 将画好线的滤纸条插入层析液中，用棉塞 塞紧试管口。 观察现象：10min后，将滤纸条取出，风干。 观察色素带及其颜色，作好记录。
观察植物细胞的有丝分裂
实验步骤：
• 洋葱的根尖预培养（已完成）
实验步骤
• 解离：
质量分数为15％ 的盐酸与体积分数 为95％的酒精溶液 的混合液（1：1） 使细胞彼此分开！
切片：花生种子（浸泡３－４h），去皮，将子叶削成薄片。
选取最薄的切片置于洁净的载玻片中央 染色：在薄片上滴加23滴苏丹Ⅲ染液，染色23min
制片
洗去浮色：用吸水纸吸去染液，滴加体积分数为50%的酒精12滴 制成临时装片：滴12滴蒸馏水，盖上盖玻片
镜检观察：在低倍镜下寻找到已着色的 圆形小颗粒，然后用高倍镜观察。
黄豆组织样液（或鸡蛋清稀释液）
浸泡 研磨 稀释
去皮、切片
过滤
鸡蛋清稀释液
滤液
蛋清液
向试管中注入 2ml双缩脲试剂A
加入3-4滴双缩 脲试剂B
观察现象
观察颜色变化：无→紫色
结论：加入双缩脲试剂A后，颜色呈现为无色，加入B后，变为 紫色，说明鸡蛋清中有蛋白质存在。
四、淀粉的检测：
（1）原理：淀粉 + 碘 （2）选材：马铃薯匀浆 （3）检测过程： 2 ml组织样液 2滴碘液 观察颜色变化 蓝色
刚配制的斐 林试剂2mL
水浴加热
振荡混匀
呈现浅蓝色
50～65℃水浴 加热2min
变成砖红色（Cu2O）
制备组织样液
梨或苹果
砖红色的糖（还原糖）非（斐林试剂）常好吃
洗净、去皮、切块
取5g，放入研钵中
研磨
过滤
（用单层 纱布）
滤液
显色反应
向试管中加入 2ml组织样液 向试管中加入2ml 振荡混匀 新配制的斐林试剂 或本尼迪特试剂 50～65℃水 浴加热2min
1.取3支试管分别编号为：A、B、C。分别加入 1ML过氧化氢酶溶液。 2. A中加入1ML清水。 B、C中分别加入等量氢 氧化钠溶液和盐酸溶液。摇匀。 3.在三支试管中分别同时加入2ML过氧化氢溶液。 4.一段时间后，观察试管中是否有气泡冒出（或 卫生香的复燃情况）。
实 验七
叶绿体中色素的提取和分离
取2－3mm根尖放入解离液中解离35min
注意！！
控制解离时间 （为什么?过长过短会如何?）
实验步骤
• 漂洗
用镊子将解离后的根尖放入盛有 清水的玻璃皿中漂洗10分钟
（ 思考：目的？）
实验步骤
• 染色（重要！！） 轻轻取出漂洗干净的根尖放入龙 胆紫中染色3-5分钟
碱性染料
注意:
染色的时间控制,建议4分钟 （过长或过短会怎样？）
为什么要这样处理？
二、实验：探究pH对过氧化氢酶活性的影响
序号 1 2 3 ４ 项 目 1 2mL 1mL / / 试管 2 2mL / 1mL / 3 2mL / / 1mL
注入过氧化氢溶液 注入蒸馏水 注入氢氧化钠溶液 注入盐酸
5
6
注入新鲜的肝脏研磨液
结果现象
1mL1mLຫໍສະໝຸດ 1mL2.实验步骤：
高中生物人教版
实验课
实验1：使用高倍显微镜观察 几种细胞
一、显微镜的使用方法步骤
1、取镜安放 一手握镜臂，一手托镜座，将显微镜 放在实验台的左侧，安上目镜和物镜。 2、对光 将低倍物镜对准通光孔，左眼注视 目镜，转动反光镜，转动遮光器选用 合适的光圈，直到看到一个明亮的视 野。
3、放置装片
把所要观察的玻片标本放在载物台上，用 压片夹压住，标本要正对通光孔的中央。
制备组织样液
马铃薯块茎 显色反应 向试管中注入2ml组织样液
洗净、去皮、切块
取5g，放入研钵中
研磨
过滤
滤液
加入5滴碘-碘化钾
观察现象
观察溶液颜色变化：无色→蓝色
结论：溶液变蓝，说明马铃薯组织中有淀粉存在。
讲解：陈嘉欣
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一、制片
滴 载玻片上滴一滴质量分数为 0.9%的氯化钠溶液。
刮 用消毒牙签刮取口腔上皮细 胞，注意不要用尖头部分， 涂 将牙签在氯化钠溶液中涂抹。
观察现象
观察溶液颜色变化：浅蓝色→棕色→砖红色
结论：生成砖红色沉淀，说明梨或苹果中含有还原糖。
2 ml组织 样液
2 ml新配制的 斐林试剂
5065℃水 浴加热约 2min
观察颜色变化
二、脂肪的检测 （1）选材：经浸泡去种皮的花生种子。 （2）检测过程：
苏三（苏丹Ⅲ）送了我一个橘黄色的胭脂（脂肪）
• 先低倍镜后 高倍镜观察 （计时） 吸水纸吸引
中央液泡逐渐变小（紫色加深）
原生质层与细胞壁逐渐分离
（重复几次，使洋葱鳞片叶表皮完 清水 全浸润在清水中）
先低倍镜后 高倍镜观察 （计时）
中央液泡逐渐胀大 原生质层逐渐贴近细胞壁
（计时） 同样的步骤选择用以下溶液重复一遍 8%的氯化钠溶液、 0.5g/ml蔗糖、 5%的硝酸钾、 一定浓度的尿素、 甘油。
视野中 有橘黄 色颗粒
三、蛋白质的检测：
（1）原理：蛋白质 + 双缩脲试剂 合物
（2）选材：黄豆、鸡蛋清（稀释）、 牛奶、豆浆
紫色络
（3）检测过程：
2 ml组织 样液 2 ml双缩脲试剂 A液，摇匀 3-4滴双缩脲试 剂B液，摇匀
观察颜色变化
制备组织样液
黄豆 鸡蛋 显色反应
向试管中注入 2ml组织样液
烘
将载玻片放置于酒精灯上方 烘干。
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二、水解
在小烧杯中放置 8%的盐酸， 再将烘干的载玻片放在小烧 杯中。
8%的盐酸改变细胞膜的通透
性，加速染色剂进入细胞， 在大烧杯中加入30℃温水， 将小烧杯放入大烧杯中水浴 同时使染色质中的DNA与蛋 保温 5分钟。 白质分离，有利于 DNA与染 色剂结合。
4、观察
低倍镜观察： （1）转动粗准焦螺旋使镜筒下降（侧面注视物 镜） （2）反方向转动粗准焦螺旋使镜筒缓缓上升 （3）看到物象后，调节细准焦螺旋使物象清晰
使用高倍镜观察
（一找，二移，三换，四调）
首先低倍镜下找到清晰物像 （1）转动反光镜或换 用光圈，使视野明亮
（2）将要放大的 物象移到视野中 央
实验六
• 探究影响酶活性的因素
一、探究温度对淀粉酶活性的影响 试管 1 2 2mL 2mL 37℃温水 0 ℃ 1mL 1mL １滴 １滴 3 2mL 100 ℃ 1mL １滴
淀粉溶液 温度 淀粉酶溶液 碘液
结果现象
不变蓝
变蓝
变蓝
1.实验步骤：
1.取6支试管分别编号为：A、A’、B、B’、C、 C’。 2.在A、B、C中分别加入2ML淀粉溶液。在A’、 B’、C’中分别加入1ML淀粉酶溶液。然后将A、 A’放在37℃水浴中， B、B’放在0 ℃冰水中， C、C’放在100 ℃水浴中。保持温度5分钟。 3.然后同时将三个酶溶液倒入相应水浴中的淀粉 溶液中摇匀，保持相应的水浴温度。 4.一段时间后，在A、B、C中分别加入1滴碘液， 观察试管中的颜色变化。
• 制片
切 用镊子将根尖取出放在载玻片上，
加一滴清水， 盖盖玻片， 再加一个载玻片， 轻轻的挤压两个载玻片，使细胞分散。
实验步骤 散
注意： 盖盖玻片时尽量不产生气泡 太重，破坏细胞结构；太轻，细胞不能分散
实验步骤
• 观察 用显微镜观察细胞有丝分裂的各个 时期 • 注意： 先低倍后高倍 爱护显微镜，特别是物镜保护 我们的目标是分生区细胞
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实验流程 •(1)观察叶绿体
•(2)观察线粒体
观察植物细胞的 质壁分离与复原
实验步骤
制作洋葱鳞片叶表皮细胞临时装片(不要选最外层的鳞片叶，死
细胞太多）
先低倍镜后 高倍镜观察
紫色中央液泡的大小 原生质层紧贴细胞壁 吸水纸吸引(重复几次，使洋葱鳞片
叶表皮完全浸润在溶液中)
0.3g/ml 蔗糖溶液
4、根据测量结果进行计算，并将结果填在记 录表中
实验一 细胞减数分裂观察
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三、冲洗
取出载玻片用蒸馏水冲洗载 玻片10秒。
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四、染色
用吸水纸吸去载玻片上的水 分。
滴加甲基绿和吡罗红染色剂 进行染色，染色5分钟。
盖上盖玻片。
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用吸水纸吸去染色剂
五、观察