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《同工酶实验》PPT课件

垂直板聚丙烯酰胺 凝胶电泳分离乳酸 脱氢酶同工酶
(活性染色鉴定法)
实验目的:
• 理解同工酶的概念及遗传学意义 • 学习聚丙烯酰胺凝胶电泳原理 • 掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳操作技术 • 掌握乳酸脱氢酶同工酶及酶活性染色
同工酶
是指能够催化相同的化学反应,但酶分子结构、理化特性乃至免疫 学性质不同的一组酶。它们是由遗传体系决定的在不同组织中表达 的蛋白质作用相同,但分子结构、理化特性等不同。
实验流程
一、动物组织的样品的获取 二、试剂的配制、仪器的准备 三、分离胶(30分钟) 四、浓缩胶(20分钟) 五、电泳(2-3小时) 六、染色(30分钟) 七、观察结果
一、试剂:
1.凝胶储备液: A储备液: pH8.9 Tris~HCl缓冲液:1 M HCl 48ml,36.6g Tris,加 双蒸水到
本实验做的是乳酸脱氢酶(LDH)的分离鉴定。
聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质的原理
天然状态生物大分子进行的电泳,利用蛋白质分子中所带净电荷、分子质量、 形状的差异,而在电场中泳动的速度和方向不同,达到分离的目的。
多数蛋白质的pH在中性偏酸性范围,通常是将样品在碱性缓冲系统中进行 电泳,蛋白质分子带负电荷,以不同速度向阳极迁移,称为阳极电泳;
• 取上清液至新管,吸取其中150ul样品,加100ul 甘油和10ul 溴酚蓝,混匀之后即可点样。
三、分离胶的制备
储备液
配方表 A储备液 C储备液 双蒸水 E储备液
TEMED 总体积
用量(ml)2.5
5.0
12.5 100ul
10ul
20
• TEMED最后一个加入,轻轻混匀,操作迅速。胶高度距样品凹玻璃板 下缘约1cm,用移液枪在凝胶表面沿短玻板边缘轻轻加一层水以隔绝空 气,并使胶面平整。
1
1.电泳槽
2.梳子 3
3.制胶器
4.夹胶框 2
封胶条
4
二、样品的制备
• 取材:鲫鱼若干条,解剖取眼、鳃、肺、肝、肠、肉、卵 、 心脏,放入冰箱保存。
• 提取酶:取不同组织块,加入提取缓冲液Tris-Hcl(pH=7.0) 此溶液需4℃预冷,组织重量(g)与缓冲液体积(mL)之 比为1:5。用研钵研磨充分。浆液4℃离心约30分钟, 15000转/分钟。
• 水与凝固的胶面有折射率不同的界限,用滤纸吸去多余的水。
四、浓缩胶的制备
储备液
用量 (ml)
B储备 液
1.25
配方表
D储备 液
2.5
双蒸水 F储备 液
1.2
5
E储备 液
60ul
TEME D
16ul
总体积 10
• TEMED最后一个加入,轻轻混匀,操作迅速。浓缩胶液高度到凹玻璃 板下缘0.5cm左右,然后插入样品梳,注意不要产生气泡。约30分钟后, 凝胶完全。
80ml,调节pH到8.9定容到100ml。 B储备液 : pH6.7 Tris~HCl缓冲液:1 M HCl 48ml,5.98g Tris,加双蒸水到
80ml,调节pH到6.7定容到100ml。 C储备液: 分离胶储备液(30% Acr/Bis):30g Acr,0.8g Bis,用双蒸水定容
到100ml,备用,4℃存放可以保存1个月。 D储备液: 浓缩胶储备液:16g Acr,4g Bis,用双蒸水定容到 100ml,备用,
3.乳酸脱氢酶染色剂的配制 1M -乳酸钠 0.5ml NAD 25mg PMS 2mg NBT 15mg 0. 2M Tris-Hcl溶液(PH8.0)2ml 去离子水定容至50ml
器材:
夹心式垂直板电泳槽,梳子,直流稳压电源(电压300-600V, 电流50-100mA),移液枪(各种量程),烧杯(100mL), 培养皿
• 为什么要在样品中加入少许溴酚蓝和甘油溶液? 分别有何用途?
•谢谢
附:分离胶、浓缩胶配方
储备液 A储备 液
用量
2.5
(ml)
C储备 双蒸水 E储备液 TEME 总

(APS)
D
体积5.ຫໍສະໝຸດ 12.5 100ul 10ul 20
储备液
用量 (ml)
B储备液 1.25
D储备液 2.5
双蒸水 1.2
F储备液 5
4℃可以保存1个月。 E储备液: 10% Aps(W/V):1g定容到10ml,-20℃保存。 F储备液: 40%蔗糖:40g蔗糖溶解到60ml双蒸水中。 TEMED
2.电泳缓冲液: Tris6.0g,28.8gGly 加双蒸水到900ml调节pH到8.3,定容到1000ml,使用 时 稀释10倍。
E储备液 TEME 总
(APS)
D体 积
60ul 16ul 1 0
感谢下 载
带孔胶
小分子
按分子 大小分离
聚丙烯酰胺凝胶电泳的类型
连续系统
相同孔径的凝胶、缓冲系统,是利用蛋白质分子的主要靠 电荷和分子筛效应进行分离。
不连续系统
不同孔径的凝胶和不同缓冲体系的电泳方式,在电泳分离过 程中,由于浓缩胶的堆积作用,可使样品在浓缩胶和分离胶 的界面上先浓缩成一窄带,对样品进行浓缩,浓缩效应,然 后在一定浓度或浓度梯度的凝胶上进行分离,既存在电荷效 应,也有分子筛效应。
• 观察拍照
m:肌肉(muscle);l:肝脏(liver);k:肾脏 (kidney);s:脾脏(spleen);h:心 (heart); e:眼睛(eye);f:鳍(fin);g: 鳃(gill);b:脑(brain)
思考题:
• 根据实验过程的体会,总结如何做好聚丙烯酰胺 凝胶垂直板电泳?哪些是关键步骤?
• 小心拔出样品梳(两端同时向外拔)。
点样
加样
样品迁 移方向
五、电 泳
• 电压和电流:电压180V, 电流流18-30mA; • 溴酚蓝跑至分离胶末端,电泳结束。
六、染色与观察
• 揭去上面长型玻璃板,凝胶从短型玻璃板上剥离,慢慢地把 胶板冲入白瓷盘或大培养皿内,避光于37度摇床中染30min。
对于一些碱性蛋白,使用酸性缓冲系统进行电泳,蛋白质分子带正电荷而 向阴极迁移,称为阴极电泳。
电泳 缓冲液
加在槽中的样品
夹在两块玻璃 板之间的凝胶
电泳 缓冲液
电源
分子量大 分子量小
电泳过程中分子迁移的规律,小分子走在前头,大分子滞后。
电泳凝胶相当于凝胶过滤中的一个带孔胶粒。
电泳方向
混合样品 电泳
大分子
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