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流式细胞分析技术


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流式细胞发展史
1930年,Caspersson 和Thorell开始致力于细胞的计数。 1934年,Moldaven 是世界上最早设想使细胞检测自动化的人, 他试图用光电仪 记录流过一根毛细管的细胞。 (从固定式细胞 分析-流动式) 1953年,Croslannd-Taylor 应用分层鞘流原理,成功的设计红 细胞光学自动计数器。 同年,Parker 和Horst 描述一种全血细胞计数器装置,成为流 式细胞仪的雏形。 1965年,Kamemtsky等提出两个设想,一是用分光光度计定量细 胞成分;二是结合测量值对细胞分类。 1967年,Kamentsky 和Melamed 在Moldaven的方法的基础上提出 细胞分选的方法。
Laser
FSC
荧光
SSC
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细胞散色光信号
Forward Angle Light Scatter (FSC)
Laser
FALS Sensor
细胞对光的散色现象与细胞样品制备无关.
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90 Degree Light Scatter (SSC)
Laser
FALS Sensor
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流动室(Flow Chamber)
流动室由样品管、鞘液管 和喷嘴等组成,常用光学 玻璃、石英等透明、稳定 的材料制作,是液流系统 的心脏。 样品管贮放样品,单个细 胞悬液在液流压力作用下 从样品管射出;
鞘液由鞘液管从四周流向 喷孔,包围在样品外周后 从喷嘴射出。
Injector Tip
Laser
FALS Sensor
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流式细胞仪特点
单细胞悬液 或生物颗粒 分析速度高 多参数 精度高 当代最先进的细胞 定量分析技术
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FCM还可在对样品细胞多参数分析测定的基础上,结 合多种细胞生物学特性,将样品中特定的细胞亚群高 纯度地分选(sorting)出来(活细胞点对点分选), 单独收集以供进一步深入研究 如:形态学检查、细胞功能研究、细胞培养、分子生 物学研究
流速与压力的关系服从Bernoulli方程,即 P=(1/2)V2 (忽略高度的变化)。改变气压,就可获得不同的流速。 上海交通大学医学院
BD FACSCanto II 液流系统
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(2)激发光源与光束成形系统
激光(Laser, light amplification by stimulated emission of radiation)是一种相干光源。 单波长,高强度,高稳定性 FCM 的激发光源大多采用氩离子气体激光器(488nm),一些FCM也 配有其他各种激光器,如氪离子激光器、氦镉激光器、氦氖激光器、染 料激光器和半导体激光器等。 一般选配2-4根激光,488nm 、633nm和355nm、407nmUV激光
90LS Sensor
细胞对光的散色现象与细胞样品制备无关 . 上海交通大学医学院
Байду номын сангаас
FSC
FSC信号的强弱与细胞的大小和活力相关
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SSC
SSC信号的强弱与细胞内颗粒多少相关
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细胞散色光信号
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(2)细胞荧光信号
主要包括两部分: ①自发荧光,即不经荧光染色细胞内部的荧光分子经光 照射后所发出的荧光; ②特征荧光,即由细胞经染色结合上的荧光染料受光照 而发出的荧光,其荧光强度较弱,波长也与照射激光不同。 自发荧光信号为噪声信号,在多数情况下会干扰对特异荧 光信号的分辨和测量。
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层流是液体稳定流动的必要条件,管道中层 流的形成要满足雷诺数 dρV Re = < 2300, η 式中ρ、η分别为液体的密度和粘滞系数,d 和V分别为管道的直径和液体的平均流速。 FCM利用层流技术,使细胞流动稳定,并具有自 聚焦作用,为细胞分析分选提供技术保证.
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样品细胞流经仪器检测区时受到激发光的照射, 同时产生细胞的散射光信号和细胞的荧光信号。 这些信号以被检细胞为中心向空间360度立体 角发射
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细胞的荧光信号取决于细胞荧光染色方法和所 使用的荧光素种类 近年来荧光素化学技术发展很快,现已可做到 用一束激光(488nm)激发三种染料(甚至四 种或更多染料)而得到各自波长不同的荧光。 这已能满足目前大多数研究和临床检验工作的 需要
细胞荧光信号
荧光信号的测量:
经过 PMT 将光学信号转变为电脉冲信号,并增加 PMT的电压及增益,可将脉冲信号进行放大。放大方式 有两种: 线性放大(Lin):
AMP
对数放大(Log):
AMP
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细胞荧光信号
荧光检测器检测特定荧光的特定发射波长 线性测量 对数测量
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流式细胞发展史
1969年,Van Dilla,Fulwyler及其同事们在Los Alamos,NM (即现在的National Flow Cytometry Resource Labs)发明 第一台荧光检测细胞计。 1972年,Herzenberg 研制出一个细胞分选器的改进型,能够 检测出经过荧光标记抗体染色的细胞的较弱的荧光信号。 1973年,BD公司与美国斯坦福大学合作,研制开发并生产了 世界第一台商用流式细胞仪FACS I。 从此,大量的厂家不断研制生产出自己的流式细胞仪,流式 细胞术进入了一个空前飞速发展的时代。 1979年, SSMU: FCM 推广 1980年, BJNU: 国内第一台 FCM (FACS III) 进入九十年代,流式细胞术作为一门生物检测技术已经日臻 完善,而随之而来的就是应用领域的日趋广泛。而今,流式 细胞仪已经深入到生物学、医学、药物学等的各个分支领域, 并将在未来为我们的科学研究发挥更大的作用。
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从定量的角度研究
- 细胞的形态学参数
- 生物学特征 - 细胞化学成分及含量 - 细胞的功能
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概念
流式细胞仪(Flow Cytometer) 集激光技术、电子物理技术、光电测量技术、电子计算 机技术、细胞荧光化学技术、单克隆抗体技术为一体的 一种新型高科技仪器。 流式细胞术(Flow Cytometry,FCM) 利用流式细胞仪对处在快速、直线、流动状态中的单 细胞或生物颗粒进行多参数、快速定量分析,同时对特 定群体加以分选的现代细胞分析技术。
上海交通大学医学院 光电倍增管的增益从103到108可连续调节,因此对弱光测量十分有利。
信号转换系统:光

数字信号
PMT可将散色光及荧光信号转换成电脉冲信号,电脉 冲信号通过模数转换器(ADC)量化为数字信号.
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(二)细胞信号的检测与分析
制备好的单细胞悬液经仪器检测区时受到
激发光的照射.激光与细胞相互作用后可产生
鞘液
荧光信号
激光束
通过流动室后细 胞一个一个排列 成单行,依次通过 检测区.把流动室
称为单细胞流
发生器 . 上海交通大学医学院
液流中心由单列匀速运动颗粒组成的液柱
为了保证液流是稳液,一般限制液流速度 υ <10m/s。由于鞘液的作用,被检测细胞被 限制在液流的轴线上。
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液流驱动系统(示意图)
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BD FACSCanto II
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讲课内容
1 2 3
基础理论
细胞样品制备技术
在医学生物学中的应用
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基础理论 (一)FCM仪器的一般结构
Y
细胞流动室及其液流驱 动系统(Z) 激发光源及其光束成形 系统(X) 细胞信号检测(Y)分析、 显示、记录系统
FCM检测分析的细胞荧光信号主要指经过特异荧光染色后细胞受 照发射的荧光信号
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自发荧光信号与特异染色的荧光信号分析图 自 发 荧 光 信 号
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特 异 染 色 的 荧 光 信 号
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荧光信号的线性测量 对数测量 荧光光谱重叠及其校正方法
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光收集系统:光电倍增管(PMT)
细胞散色光的波长是与激发光波长一致的. 前向散色光信号:检测器采用光电二极管 侧向及荧光信号用光电倍增管(PMT)
流动细胞 双色滤镜
PMT
2
PMT 4
PMT
3
Bandpass Filters
PMT
1
光电管
激光
荧光染色的细胞受合适的光激发后所产生的荧光一般由光电倍增管 (PMT)检测。 PMT的响应时间短,仅为ns数量级;光谱响应特性好,在200~900nm的 光谱区,光量子产额都比较高。
球透镜和柱面透镜 : 20×200m 椭圆形光斑,短轴和细胞流平 行,长轴与细胞流垂直。
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光 束 成 形 与 细 胞 受 照 方 式
这种椭圆形光斑的
检测区保证每个细
胞分别受到光照 且受检时受到一致
激发光焦斑
的光照
FCM的
单细胞照明技术.
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(3)细胞信号检测与分析处理系统
光源的谱线愈接近被激发物质的激发光谱的峰值,所产生的荧光信号愈强。 若激发光波长都是488nm,而发射光波长又不是极其接近的话,即可同时检 测两种以上的荧光。如FITC和PE双染就符合这种条件。 对于有较高水平自发荧光类型的细胞,如长期组织培养的细胞,应使用较高发 射波长的荧光染料(APC、APC-Cy7等)标记抗体,通常他们会有一个较好 信噪比的结果。 对于那些不是有较多自发荧光类型的细胞,如新鲜的细胞,可以使用FITC 标 记的抗体了。
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