当前位置:文档之家› 玫瑰花红色素提取工艺研究

玫瑰花红色素提取工艺研究

玫瑰 !!"#$ %&’"#$ ()&*+ " 是蔷薇科蔷薇属植物, 多年生常绿或落叶灌木, 品种多 、 产量大、 花期长。 玫瑰花性温味甘微苦, 《 本草再新》 云: “ 舒肝胆之郁 气, 健脾降火” , 可杀菌、 消炎、 预防流感、 气管炎、 咽 炎。玫瑰花还可以为酒、 熏茶、 做蜜饯。欧洲一些地 区直接食用, 有清热解渴, 理气活血, 宜气养颜之功 效[#] 。 玫瑰花花瓣层厚, 色彩鲜艳, 适合提取色素[$] 。 玫瑰花红色素属于花色苷类物质, 是世界各国普遍 允许使用的一类天然红色素[%] 。它除了保护心血管 和中枢神经系统、抗氧化及抗自由基、抗肿瘤、 抗 炎、 抗菌、 抗病毒、 降血糖等作 用 外 , 还有保护视力 的独特功效, 美国有用作抗氧化营养增补剂的花色 [*] 苷片剂产品 !每片含 &’ ()" 。本实验研究玫瑰花红 色素总含量的测定方法及提取条件。 ! 材料和方法 #+# 材料和试剂 玫瑰花 ! 产自辽宁 "; 无水乙醇、 柠檬酸、 氯化钾、 醋酸钠、 盐酸均为分析纯。 #+$ 仪器设备 ,-.##’’ 紫外 . 可见分 光 光 度 计 , 分 析 天 平 , //.0 型恒温水浴锅, 1/2.$& 型酸度计, 2/3.4!!"
图 " 料液比对提取率的影响
!&’&; 确定提取次数 从图 ** 可以看出提取次数越多,累计提取量
越高, 但是提高幅 度 不 同 , 第三次和第四次提取量 非常低, 因此提取 ! 次即可。
!&’&’ 乙醇浓度对提取的影响
乙醇的溶解性能好, 穿透细胞能力强, 随乙醇 浓度的增加, 提取液吸光值增加, 但乙醇浓度过大, 提取液吸光值反而减小, 即花色苷提取量减小 , 醇溶 性杂质、 亲脂性强的 成 分 溶 出 量 增 加 , 这些成分同 乙醇 - 水分子结合,导致花色苷溶解减少 .。从图 / 知, 乙醇最适浓度是 0" 1。
,-
!""#$%&’$!($)*$+
食品研究与开发
食品工艺
玫瑰花红色素提取工艺研究
陈 伟, 孟宪军, 王立男 辽宁 沈阳 ##’#0#" !沈阳农业大学食品学院,
摘要: 研究了天然玫瑰花红色素总含量的测定方法以及溶剂法的提取工艺。玫瑰花红色素属于花色苷类物质, 它在不 同溶剂中最大吸收波长不同,在同一溶剂中不同 7/ 值下最大吸光值不同,所以采用经典的 7/ 值示差法测定总含 量。本实验测定了缓冲液中玫瑰花红色素最大吸收波长, 选择出合适的提取剂, 由单因素试验, 正交试验得出最佳提 浸提 $& (CD。提取 $ 次。 取条件 a在 && B乙醇水溶液, 7/ 值 #+&,料液比为 #)a%& (E 条件下, 关键词: 玫瑰花; 色素; 提取 ; 7/ 值示差法
表 ! 不同提取剂的提取效果 提取剂种类 $ "柠檬酸
图 " 提取液在紫外区间的吸收图
:$!/1(
’+’9#
7$ "柠檬酸 ! "盐酸 #$ "乙醇 ’+’0, ’+’$7 ’+/’9
图 ! 提取液在可见区间的吸收图
/+/ 测定方法的确定 /+/+! 溶剂对最大吸收峰的影响 由表 ! 可知,由溶剂对玫瑰花红色素最大吸收峰 随溶剂极性减小, 4!(56%有明显影响, 4!(56%向红波方向移动。 /+/+/ -. 值对最大吸收值的影响
2H,4;62 I8 H/6 6JH5>:H;I8 H6:/8IEIKL IM 564 1;KN68H M5IN 5I26 N68K JC=D.QRD, O>8K EC.D=D :/68 OPC, !MSST 2?CPD?P :SUUP)P SV 2FPDW=D) >)XC?RUYRX=U ,DCZPX[CYW , 2FPDW=D) ##’#0# , EC=SDCD), :FCD=" "#$%&’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‘ _P TS YFP [CD)UP V=?YSX P\7PXC(PDY =DT YFP E@ [SD=^UP [SUZPDY+ 4RXCD) YFP [YRTWCD) SV P\YX=?YCSD ?SDTCYCSD[, !%*" SXYFS)SD=U YP[Y 7U=D YS ?SDVCX( YFP ^P[Y P\YX=?YCSD ?SDTCYCSD YF=Y C[ R[CD) YFP PYF=DSU _FC?F ?SD?PDYX=‘ YCSD C[ && B =DT 7/ Z=URP C[ #+& YS [S=] YFP XS[P[ $& (CD =DT YFP X=YCS SV (=YPXC=U[ YS CDVR[CSD[ C[# )a%& (E +OP =U[S ?SDVCX( _P TC[YCUU YFP 7C)(PDY[ Y_C?P ^W TSCD) YFP P\7PXC(PDY+ )*+ ,-&.$: XS[Pb 7C)(PDYb P\YX=?YCSDb 7/ TCVVPXPDYC=U (PYFST
!"
!""#$%&’$!($)*$+
食品研究与开发
食品工艺
提取 !" #$% 即可。
比 .。最佳提取条件是 5*9(:(8*,即 (2 倍于原料的 在 67 *&2 条件下, 浸提 !2 #$% 。 22 1乙醇,
表 & 正交试验表 实验号 色素的提取量 5 8 9 : 67 值 时间 ,#$%. 料液比 ,@ A #B. 浓度 ,1. ,5CD. *&2,*. *2,*. !2,*. *: 22,*. ;&(*’ (",!. *&2,*. !",!. *: 0",!. )&*)2 (2,(. *: *&2,*. !2,(. 02,(. ;&;/* *: (",!. !&",!. *2,*. 02,(. 0&*00 (2,(. *: !&",!. !",!. 22,*. ;&2)( !2,*. *: !&",!. !2,(. 0",!. ;&’;) (2,(. *: !&2,(. *2,*. 0",!. 0&0); !2,*. *: !&2,(. !",!. 02,(. 2&;*’ *: (",!. !&2,(. !2,(. 22,*. ;&2;’ 0&)(2 ;&;0( 0&;!! ;&’/" ;&(") ;&";0 ;&*0* ;&’2" ;&(2’ 0&02) ;&0*’ 0&22; "&2*) *&*"2 "&)/! "&/(( -
/+7 最佳提取条件的选择 /+7+! -. 值对提取的影响 从图 # 可以看出,当 -. 为 / 时,提取效果最 好。而且低 -. 环境利于花色苷稳定。
图 ) %& 值对提取的影响
/+7+/ 时间对提取的影响 从图 0 可以看出,浸提时间超过 /’ (81 后, 吸
图 # 中性色素水溶液吸收曲线
பைடு நூலகம்
光值增加不明显, 说明已基本达到溶解平衡, 因此
图 ’ %&"(’ 色素水溶液吸收曲线
由 图 ,、 7、 $ 可知,等量玫瑰花红色素在不同 最大吸收峰处吸光值不同, -. 值的同种溶液中, -. 越低, 吸光值越大。 由此可见, 用直接测定法进行色素总含量测定 时,溶剂种类的改变会引起最大吸收峰的变化; 而 溶剂的 -. 对最大吸收峰基本没有影响,但会引起 [#] 。 最大吸光值的变化, 两者都严重影响了测定结果 示差法的依据之一为花色苷发色团的结构转 换是 -. 的函数,依据之二是起干扰作用的棕褐色 4降解% 产物的特征光谱不随 -. 而变化。通过两个 同一波长 4 如花色苷最大可见吸收波长 % 下的 -. 值、 吸光度差就可测得花色苷的浓度, 因为在吸光度差 中扣除 了 干 扰 物 质 的 吸 光 度 。 示 差 法 通 常 选 用 的 [0] 。玫瑰花红色素在缓冲溶液中, 用 -. 为 !+’ 和 7+$ 示差法测得其最大吸收峰为 $!/ 1(。 /+, 提取剂的筛选 由表 / 可知, #$ "的乙醇是最合适的提取剂。
相关主题