有关细胞和组织学技术一、细胞和组织免疫组织化学技术是用标记物或显色物标记的抗体检测细胞和组织内的抗原，从而达到诊断和研究疾病的目织标本质量的好坏有着密切的联系。

由于各种抗原的生化、物理性质不同，如温度高低、酸碱度强弱及各种化学的细胞和组织学结构将有助于抗原的准确定位。

因此，细胞和组织标本的采集制备在免疫组织化学技术中占有十（一）细胞标本的取材目前，免疫组化技术已经应用于细胞学诊断，如鉴别低分化癌与恶性淋巴瘤、黑色素瘤、低分化肉瘤等。

应用于淋巴白血病和恶性淋巴瘤的分类分型。

近年来，培养细胞的免疫组化技术在鉴定细胞的种类、分化程度、研究均起到了积极作用。

细胞标本的取材有以下3种方法:1．印片法主要应用于活组织检查标本和手术切除标本。

新鲜标本以最大面积剖开，充分暴露病变区，玻片上，立即浸入细胞固定液内5-10min，取出后自然干燥，低温保存备用。

优点是简便省时，细胞抗原保存较好。

缺点是细胞分布不均匀，玻片上细胞重叠，影响标记效果。

2．穿刺吸取涂片法主要应用于实质器官的病变区，如肝、肾、肺、淋巴结、软组织等。

用细针穿刺吸抹在载玻片上，力求细胞分布均匀。

如穿刺液较多，细胞丰富，可用洗涤法：将穿刺液滴入盛有1-2ml Hanks液（低速离心5-10min后，弃上清液，将沉淀制成细胞悬液（浓度约2×106细胞/ml），吸取1滴于载玻片上，轻轻涂该法穿刺吸取直接涂片的优点是操作简便，细胞形态保持较好。

缺点是细胞分布不均匀。

洗涂法片虽可弥补3．体液沉淀涂片法主要用于胸水、腹水、尿液、脑脊液等体液多、细胞少的标本。

体液采取后，必须量的多少选用不同的处理方法：①细胞数量极多者，可吸取少量液体直接涂在玻片上。

②细胞数量较少者，可将液体自离心10min，弃上清液，将沉淀涂片，略干后固定备用。

如用细胞离心涂片器(Cytospin )，可将标本用上述离心沉淀法制成2×106细胞/ml的细胞悬液，吸取50μl加入细胞分布在直径约6mm的小圆圈内，每个圆圈内的细胞数约105个(Danos,1976)。

培养细胞标本的取材可根据培养的细胞特性分别采取不同的方法。

某些细胞有贴壁生长的特性，如纤维母细入培养液内即可收集到理想的细胞标本。

某些细胞只能在培养液中生长，可用上述体液沉淀离心涂片法处理。

制备细胞涂片应注意：①标本反复离心洗涤，细胞的粘附性降低，在免疫组化染色过程中容易脱片，因此，试剂和便于镜下观察和记数，应将细胞集中到直径0.6-1.0cm的圆圈内，细胞总数以105个为宜。

③粘液丰富的标宜作免疫组化标记。

（二）组织标本的取材组织标本主要取之于活组织检查标本、手术切除标本、动物模型标本以及尸体解剖标本等。

前三者均为新鲜不同程度的自溶，其抗原可能有变性消失，严重弥散现象，因此，尸检组织应尽快固定处理，以免影响免疫组化HBcAg等在尸检标本中，抗原显示仍较好。

组织标本的取材常常受到各种因素的影响，如各种内窥镜钳取的组织，常因过度挤压而变形，严重者组织结组织中分布不均一，常出现人为的组织取材不准确。

为了避免上述缺点，组织取材时应注意：①活检钳的刃口必要病变区；③必须取病灶与正常组织交界区；④必要时取远距病灶区的正常组织作对照。

为充分保存组织的抗原性，标本离体后庆立即作处理，或立即速冻成冻块进行冰冻切片，或立即用固定液固迅速制片，可贮存于液氮罐内或-70。

C冰箱内备用。

二、细胞和组织的固定（一）固定为了更好的保持细胞和组织原有的形态结构，防止组织自溶，有必要对细胞和组织进行固定。

固定的作用不和内源性酶活性，更重要的是最大限度的保存细胞和组织的抗原性，使水溶性抗原转变为非水溶性抗原，防止抗不同抗原，其稳定性也不相同，因而对固定剂的耐受性差异较大。

如T淋巴细胞表面抗原属不稳定性抗原，HBsAg属稳定性抗原，其抗原活性很少受固定剂种类、固定时间、温度等因素的影响。

（二）固定剂用于免疫组织化学的固定剂种类较多，性能各异，在固定半稳定性抗原时，尤其重视固定剂的选择，介绍如1．醛类固定剂双功能交联剂，其作用是使组织之间相互交联，保存抗原于原位，其特点是对组织穿透K链和λ链的标记效果良好，背景清晰，是常用的固定剂。

（1）10%钙-福尔马林液（浓甲醛10ml，饱和碳酸钙90ml）。

（2）10%中性缓冲福尔马林液（浓甲醋10ml，0.01mol/l pH7.4 PBS 90ml）。

（3）4%多聚甲醛磷酸缓冲液pH7.4（多聚甲醛40g,0.1mol/L PBS液pH7.4500ml，两者混合加热至60℃，搅拌并滴加1n NaOH至清晰为止，冷却后加PBS液至总量1000ml）。

（4）戊二醛-甲醛液（戊二醛1ml，浓甲醛10ml，蒸馏水加至100ml）。

戊二醛是二醛基化合物，交联结合力比甲醛大，Bullock认为交联过强，可出现组织改变和空间遮蔽现象，剂用于PAP法免疫酶标记效果仍满意。

（5）甲醛升汞固定液（即B5固定液。

浓甲醛10ml，氯化汞6g,醋酸钠1.25g ,蒸馏水90ml）。

有人认为此固定液悬液是较理想的固定液，标记IgA、IgM、IgG等抗原效果良好。

也有人认为它减弱细胞的宜用于免疫荧光标记。

氯化汞是一种强蛋白凝固剂，但对组织穿透性弱，且使组织收缩，故与甲醛混合使用。

（6）醋酸-甲醛液（浓甲醛10ml，冰醋酸3ml，生理盐水加至100ml）。

Bullock等认为此液固定效果良好，组织可不经消化，胞浆IgA、IgG、IgM、IgD和K、λ、J链标记均呈阳性体仅为甲醛升汞液的1/10。

此液内醋酸既可防止组织收缩，又可暴露胞浆免疫球蛋白抗原决定簇。

（7）Bouin’s液。

该固定液为组织学、病理学常用固定剂之一，对组织穿透力较强而收缩性较小，比单独醛类固定更适合免疫较好，但Bullock则认为它可导致Igg γ重链变性，故必需加大第一抗体的浓度。

（8）Zamboni’s液。

该固定液可用于电镜免疫细胞化学，对超微结构的保存优于纯甲醛，也适用于光镜免疫细胞化学研究。

采用组织穿透力和固定效果，以保存更多的组织抗原。

固定时间6-18h。

（9）PLP液（过碘酸盐-赖氨酸-多聚甲醛固定液）。

该固定剂适用于富含糖类的组织，对超微结构及许多抗原的抗原性保存较好。

其机制是过碘酸氧化组织中的结合，从而与糖形成交联。

组织抗原大多数是由蛋白质和糖两部分构成，抗原决定簇位于蛋白部分，故该固定液响其在组织中的位置（固定剂7-9配制法见附录1）。

2．非醛类固定剂Pe等人比较几种非醛类双功能试剂指出，碳化二亚胺、二甲基乙酰胺、二甲基辛酰亚胺、单独使用时，边缘固定效应重，但与戊二醛或多聚甲醛混合使用，效果明显改善。

（1）碳化二亚胺（1-ethyl-3(3-dimethyl-aminopropyl)cardodiimi-HCI）液：2g溶于100ml0.01mol/L,pH7.4PBS IgA、IgG效果不佳。

（2）碳二亚胺-戊二醛液（ECD-G液）：配制法见附录一。

ECD-[1-ethyl-3(3-dimethyl-aminopropyl)carbodiimide Hydrochloride],即乙基-二甲基氨基丙基碳亚胺盐酸盐，简该液常用于多肽类激素的固定，对酶等蛋白质固定效果良好，对细胞内抗原定位，超微结构保存好，是一种（3）Zenker’s 液（重铬酸钾2.5g,氯化汞5g,硫酸钠1g,蒸馏水100ml,混合溶解后，临用时加水醋酸5ml）。

该固定液对免疫球蛋白染色最佳，固定时间约2-4h，染色前必须脱汞色素。

3．丙酮及醇类固定剂系最初免疫细胞化学染色的固定剂，其作用是沉淀蛋白质和糖，对组织穿透性很蛋白质、多肽及胞浆内蛋白质保存效果较差，解决的办法是和其它试剂混合使用，如加冰醋酸、乙醚、氯仿、甲（1）Clarke氏改良剂（100%酒精95ml，冰醋酸5ml），用于冰冻切片的后固定。

（2）乙醚（或氯仿）与乙醇等量混合液。

Danos（1976）等认为其组织穿透性极强，即使涂片上富于过多的粘液，固定效果仍然良好，是理想的细胞（3）AAF液：95%-100%酒精85ml，冰醋酸5ml，浓甲醛10ml。

（4）Carnoy氏液：100%酒精60ml，氯仿30ml，冰醋酸10ml，混合后4。

C保存备用。

（5）Methacarn氏液：甲醇60ml，氯仿30ml，冰醋酸10ml，混合后4。

C保存备用。

以上两种固定液适宜某些抗原，癌基因蛋白产物检测的固定，P53抗癌基因蛋白产物，PC-NA等抗原的保丙酮的组织穿透性和脱水性更强，常用于冰冻切片及细胞涂片的后固定，保存抗原性较好，平时4。

C低温冷丙酮内5-10min，取出后自然干燥，贮存于低温冰箱备用。

以上介绍了免疫组织化学中常用的固定液，用于免疫组化的固定剂种类很多（见附录），不同的抗原和标本为，迄今尚无一种标准固定液可以用于各种不同的抗原固定。

而且同一固定液固定的组织，免疫组化染色标记结固定液标准是：①最好地保持细胞和组织的形态结构。

②最大限度地保存抗原的免疫活性。

一些含重金属的固定液们，中性缓冲福尔马林（或多聚甲醛）是适应性较广泛的固定液，但固定时间不宜过长。

必要时，可作多种固定固定组织时应注意：①应力求保持组织新鲜，勿使其干燥，尽快固定处理。

②组织块不易过大过厚，必须小于制在0.3cm以内。

③固定液必须有足够的量，在体积上一般大于组织20倍以上，否则组织中心固定不良影响效果人为假象。

（三）固定方法1．浸入法（Immersion method）将组织浸泡在固定液内，必要时可在低温（4。

C）环境下进行，固定一般在2-12h之间。

2．灌注法（Irrigation method）此法适用于动物实验研究。

自左心室插入主动脉，先以krebs或生理盐注入固定液。

置灌注动物于4。

C冰箱内，次日取出脑组织或其它组织。

外周组织一般在灌注后30min内取材，织块。

有主张用冷固定剂（4。

C）进行灌注。

我们的体会是一般光镜下观察的标本，室温固定即可获满意效果。

肽类抗原活性在断绝血液供应后24h几乎完全丧失。

灌注法固定可使固定液迅速达到全身各组织。

达到充分固定之目的。

灌注冲洗还能排除红细胞内假过氧化物以及其它不能进行灌注的组织固定。

三、组织切片技术应用于光镜的免疫组织化学染色的切片厚度一般要求5μm左右，神经组织的研究要求切片厚度在20-100μm1．冰冻切片是免疫组织化学染色中最常用的一种切片方法。

其最突出的优点是能够较完好地保存多种抗原冻切片。

新鲜的组织及已固定的组织均可作冰冻切片。

冰冻时，组织中水份易形成冰晶，往往影响抗原定位。

一般认为冰晶少而大时，影响较小，冰晶小而多时，上述现象更易发生。

冰晶的大小与其生长速率成正比，而与成核率（形成速率）成反比，即冰晶形成的数量愈多量降低冰晶的数量。