PMSCs生长曲线和倍增时间的测定
【1】来自猪脂肪间充质干细胞的分离培养及其成脂分化：
取生长状况良好的P1、P3、P5、P9代细胞，用0.25%胰酶消化液，在37℃消化1-3min，制成单细胞悬液，然后以5x104个/ml密度接种到30个直径为35mm培养皿中，随机分成10组，每组3皿，每天检测一组中每皿的细胞总数，取3个皿的均值，如此至第10组结束，细胞技术如下(2004,司徒镇强)即一天消化3个组，共消化10天。
P1，P3,P5，P9均如此，每代30个皿，共计120个皿。
细胞群体倍增时间（PDT）=(t-t0)lg2/(lgN t-lgN0) t0培养起始时间，t,培养终止时间；
N0培养初始细胞数，N t培养终止细胞数。
【2】增强型绿色荧光蛋白转染猪骨髓间充质干细胞特性观察
用0.25%胰酶将转染后的细胞克隆消化为单个细胞，用PBS洗2遍，1x105个细胞加入75μl破膜剂，振荡10s,加入PI染料700μl,室温避光30min,上机检测；选同期培养的为转染细胞为对照组，比较EGFP转染对细胞增殖的影响，分别计算出静止期G0/G1,增殖期S%,和G2/M
【3】两种方法分离小型猪骨髓间充质干细胞的比较
分别取两组0,1,3代细胞，制成1x103的细胞悬液，接种到96孔板，每孔细胞悬液200微升，置37℃、5%CO2饱和湿度孵箱内孵育，各组每24小时分别取出4孔，每孔加入MTT （2mg/ml）20微升37℃孵育，4h后吸弃孔内培养液，每孔加入150微升分析纯的二甲基亚砜，移至酶联免疫检测仪上振荡10min,用分光光度计在492nm波长处测定每孔的吸光度值（OD492），以OD(492)值为纵坐标，时间为横坐标绘制生长曲线。
【4】人骨髓间充质干细胞体外培养及其生物学特性研究
取不同代数细胞，调整细胞浓度为2x104/ml后，接种于96孔培养板，置37℃，5%CO2，饱和湿度培养箱培养后，用胰酶-EDTA进行消化，用台盼蓝拒染法计数活细胞，每天取12复孔，共7天；根据计数结果绘制细胞生长曲线。
记录测得的结果，即培养潜伏期持续多长时间（12-24h）,多长时间进入对数生长期（3天后），对数增殖期持续时间（3-5天）,铺满皿底所需时间（5-7天），细胞进入平台期多长时间及持续多长时间，停止生长时间。
【5】来自;山羊骨髓间充质干细胞体外分离与培养，
选择P1，P5，P9（即早、中、晚三代）作生长曲线，进行观察，记录各自的潜伏期，对数生长期，平台期
山羊BMSC原代培养生长曲线绘制。
山羊BMSC P1、P5、P9代生长曲线。
【6】来自：胎猪骨髓间充质干细胞核移植及核移植胚胎干细胞的分离
将传至第4代生长旺盛pFMSCs(porcine fetal mesenchymal stem cells)细胞用0.25%胰酶+0.04%EDTA(称取胰蛋白酶0.5g和EDTA0.08g,溶入200mlPBS中，常温磁力搅拌器搅拌直至彻底溶解，用0.22μm孔径的滤膜过滤，无菌条件分装成小瓶（4ml/瓶），-20℃冻存)消化3-5min,培养液中和，吹打成单个细胞，调整细胞浓度为2x104个/ml,接种在两个12孔细胞培养板中，每孔接种1ml,再补加培养液1ml,混匀。
38.5℃，5%CO2,饱和湿度的条件下培养。
常规换液。
每24h用0.25%胰酶+0.04%EDTA消化液消化3孔细胞，细胞计数板计算每孔细胞总数，每孔记2次，取平均值。
细胞接种当天记为第0天，连续测定8天。
以时间（d）为横坐标，每天测定3孔细胞数的平均值为纵坐标，绘制生长曲线。
胎猪骨髓间充质干细胞周期化处理：血清饥饿处理（当细胞生长到80%汇合时，将血清浓度由10%降成0.5%，继续培养2-4天；或者是利用接触抑制处理（当细胞生长至80%汇合时，继续使用含10%NBS的DMEM培养液培养2-3天。
将上述处理的细胞常规消化离心，PBS重悬细胞，按每管106细胞分装于10ml离心管，离心，0.5mlPBS重悬细胞，边振荡边缓慢加入3ml预冷的75%乙醇，4℃过夜固定12h以上，离心去除乙醇，用含1%NBS 的PBS重悬细胞，离心洗涤2遍，200μlPBS重悬细胞，加入0.8mg/mlRNase 1ml,37℃，30min.离心，200微升PBS重悬细胞。
加入含有100μg/mlPI0.1%X-100的PBS 1ml,室温下作用10-15min，100目滤沙过滤，上机检测。
进行流式细胞仪检测。
【7】来自：猪骨髓间充质干细胞分离培养及其核移植胚胎发育潜能研究
生长曲线测定：取第3代MSCs细胞，以每孔5.0x104个/ml接种到24孔培养板内。
在37.5℃，5%CO2培养箱中培养，每天取2孔，连续7天，采用血球计数板计数法计算每孔的细胞数，取平均值，即细胞数/毫升原液=（5个大方格细胞数之和/5）x104.
绘制生长曲线，重复实验3次。
贴壁率曲线的测定：取pMSCs第3代细胞，以每瓶5x104个/cm2密度接种到12个25ml培养瓶内培养，每2h取2瓶，倒掉培养液（未含贴壁细胞），0.25%胰蛋白酶消化贴壁细胞并计数，计数贴壁率，绘制贴壁率曲线。
计算公式：贴壁率（%）=贴壁存活细胞数/接种细胞数x100%
分裂指数测定：用0.25%胰蛋白酶消化第3代细胞，以1x104个/cm2密度接种铺有盖玻片的6孔培养板中37℃、5%CO2培养箱中培养，每隔24h取出观察一次，PBS 清洗三遍后，95%乙醇固定10min,PBS清洗三遍，置于5μg/ml DAPI内染色10min,PBS清洗后，滴加甘油油滴，封片后在荧光显微镜下观察，同倍镜下取5个不同视野，计数分裂相细胞，取平均值。
连续7天，以时间（天）为横坐标，细胞分裂相的千分率（%）为纵坐标，绘制分裂指数曲线图。
【8】来自：两种培养方法在猪自体骨髓间充质干细胞培养的比较研究
直接贴壁培养法原代培养时受红细胞影响容易失败，且培养时潜伏期较长，一般为11-13天，15-17天进入对数增长期，20天左右进入生长平台期。
密度梯度离心结合直接贴壁法培养原代细胞较单纯直接贴壁法培养潜伏期较短，一般为7-9天，11-15天进入对数生长期，17天左右进入生长平台期。
【9】来自：猪骨髓间充质干细胞的分离培养及核移植后重构胚胎发育能力的研究生长曲线：取pMSCs和PF第3代细胞，分别以每孔密度5x104和6.5x104接种到24孔培养板内，上述条件培养，每天取3孔，连续7天，采用血球计数板计数法计数每孔的细胞数，计算公式：细胞数/毫升原液=(5大格细胞数之和/5)x104,绘制生长曲线。
pMSCs贴壁率曲线的测定:取pMSCs第3代细胞，以每瓶5x104密度接种到12个25ml 培养瓶内培养，每2h取2瓶，倒掉培养液（含有未贴壁细胞），0.25%胰蛋白酶消化贴壁细胞并计数，计算贴壁率。
计算公式：贴壁率（%）=贴壁存活细胞数/接种细胞数x100%.绘制贴壁率曲线。
PMSCs分裂指数测定：用0.25%胰蛋白酶消化第3代细胞，以1x104密度接种铺有盖玻片的6孔培养板中37℃，5%CO2培养箱中培养，每隔24h取出观察一次，PBS 三遍后，95%乙醇固定10min,PBS清洗三遍，置于5μg/mlDAPI内染色10min,PBS 清洗后，盖在滴有甘油的载玻片上，封片后在荧光显微镜下观察，同倍镜下取5个不同视野，计数分裂相细胞，取平均值。
连续7天，以时间（天）为横坐标，细胞分裂相的千分率（‰）为纵坐标，绘制分裂指数曲线图。
【10】，来自：猪骨髓间充质干细胞培养参考
【10】来自：SD大鼠骨髓间充质干细胞体外分离培养的实验研究
大鼠MSCs生长曲线测定：为了定量测定大鼠BMSCs的生长状况，对来源于同一动物的原代细胞进行连续培养。
分别选取生长良好的P1、P3、P5代BMSCs消化后制备成细胞悬液，调整细胞密度为5x104/ml。
接种到96孔板，每孔接种200μl细胞悬液进行培养（每孔1x104细胞）。
次日起每天选择6个培养孔各自加入MTT溶液（5mg/ml）20μl，37℃继续孵育4h后终止培养，吸出孔内上清，每孔加入150μlDMSO,室温振荡10min，使结晶充分溶解，于试验孔平行设不加细胞只加培养液的空白对照1孔。
在酶标仪上选择570nm波长，以空白孔调零，测定各孔吸光度（A）值，连续测7天，以时间为横轴，A值为纵轴绘制细胞生长曲线。
【11】来自：多耐药基因MOR1逆转录病毒载体的构建及其转染人胎盘源间充质干细胞的研究
生长曲线的绘制及对数生长期倍增时间的测定
取对数生长期细胞，消化计数，用MSC培养基制成细胞悬液（2x104/ml）,0.5ml/孔在24孔板中培养。
每天取3复孔，台盼蓝染色计数活细胞数，计算平均值，连续观察6天。
以培养时间为横轴，细胞数为纵轴，绘制细胞生长曲线。
Patterson公式计算细胞在对数生长期倍增时间，即Td=Tlg2/Lg(Nt/N0),Td:倍增时间（h）;T:细胞由N0增至Nt所用的时间（h）,N:细胞数。