操作流程
1. 使用TAE缓冲液或TBE缓冲液制作琼脂糖凝胶，然后对目的DNA进行琼脂糖凝胶电泳。

2. 在紫外灯下切出含有目的DNA的琼脂糖凝胶，用纸巾吸尽凝胶表面的液体。

此时应注意尽量切除不含目的DNA部分的凝胶，尽量减小凝胶体积，提高DNA回收率。

胶块超过300 mg时，请使用多个Column进行回收，否则严重影响收率。

注）切胶时请注意不要将DNA 长时间暴露于紫外灯下，以防止DNA损伤。

3. 切碎胶块。

胶块切碎后可以加快操作步骤6的胶块溶解时间，提高DNA回收率。

4. 称量胶块重量，计算胶块体积。

计算胶块体积时，以1 mg=1 μl 进行计算。

5. 向胶块中加入胶块溶解液Buffer GM，Buffer GM的加量如下表：
凝胶浓度Buffer GM使用量
1.0％3个凝胶体积量
1.0％～1.5％4个凝胶体积量
1.5％～
2.0％5个凝胶体积量
6. 均匀混合后室温15-25℃溶解胶块（胶浓度较大或比较难溶时可以在37℃加热）。

此时应间断振荡混合，使胶块充分溶解（约5～10分钟）。

7. 当凝胶完全溶解后，观察溶胶液的颜色，如果溶胶液颜色由黄色变为橙色或粉色，向上述胶块溶解液中加入3 M醋酸钠溶液（pH5.2）10 μl，均匀混合至溶液恢复黄色。

当分离小于400 bp的DNA片段时，应在此溶液中再加入终浓度为20%的异丙醇。

8. 将试剂盒中的Spin Column安置于Collection Tube上。

9. 将上述操作步骤7的溶液转移至Spin Column中，12,000 rpm离心1分钟，弃滤液。

注）如将滤液再加入Spin Column中离心一次，可以提高DNA的回收率。

10. 将700 μl 的Buffer WB加入Spin Column中，室温12,000 rpm离心30秒钟，弃滤液。

注）请确认Buffer WB中已经加入了指定体积的100%乙醇。

11. 重复操作步骤10。

12. 将Spin Column安置于Collection Tube上，室温12,000 rpm离心1分钟。

13. 将Spin Column安置于新的1.5 ml的离心管上，在Spin Column膜的中央处加入30 μl 灭菌蒸馏水或Elution Buffer，室温静置1分钟。

注）将灭菌蒸馏水或Elution Buffer加热至60℃使用时有利于提高洗脱效率。

14. 室温12,000 rpm离心1分钟洗脱DNA。