《中国兽医杂志》研究性稿件模版调查研究、实验观察、流行病学、比较医学、实验动物等相关内容的研究性学术稿件请参考本模版格式进行撰写。
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标题(居中,宋体三号加粗)×××1, 2 ,× ×2 ,×××3(楷体小四号)(1. 单位全称,省名市/区名邮编;2. 中国农业大学××学院,北京海淀10193;3. ××科学院××研究所,××国家重点实验室,甘肃兰州730046)(宋体小五号)摘要(黑体五号,前空2格):一般分为目的,方法,结果,结论四部分。
例如:为了……。
采用……方法。
结果显示:……;……;……。
表明……。
介绍性文字不应出现在摘要而应该在前言部分。
研究性稿件必须将具体的试验结果体现在摘要中。
出现统计分析“显著”二字时,要在后面标明显著性水平,例如:差异显著(P<0.05)。
字数建议控制在300~500个字符。
(宋体五号)关键词(黑体五号,前空2格):××;×××;××(宋体五号)中图分类号:××× 文献标志码:× 文章编号:××× (楷体五号字,居中)Title(居中,三号加粗,所有英文均用Times New Roman)ZHANG Yue-qin1, 2, Wang Li2, Huang Ya-di3(小四号字)( 1. Institute, City/District, Postcode, Country; 2. Institute, City/District, Postcode, Country; 3. Institute,City/District, Postcode, Country )(小五号字)收稿日期:2020-05-01基金项目:项目名称(项目编号);国家自然科学基金项目(31602029);广东省农业厅H7N9流感联合攻关项目(粤农函[2014]1046号)(若无,则不用填写此项;课题具体名称请勿列出)作者简介:××(出生年—),性别(民族,汉族省略),职称(无则省略),学位或学历(如为在读,学历后加上“生”),研究领域或从事工作(研究方向为……;从事……工作/研究),E-mail:×××(1995—),女(满族),兽医师,本科,从事动物检疫工作,E-mail:注:×××与××对本文具有同等贡献(如为并列第一作者,需将2位作者简介分别列出,并注明此句话)通讯作者:××,E-mail:……(如为并列通讯作者,需将作者分别列出,中间用“;”隔开;不超过3位)(此部分以脚注形式插入;均使用宋体小五号)Abstract(五号加粗,前空2格): In order to investigate……. This article use ……methods to analyze ……. Describe the results. The results indicate that…….(五号字)Key words(五号加粗,前空2格): ××; ×××; ××(五号字)Corresponding author(s): ××, E-mail: (五号字)研究性稿件引言部分通常包括以下几个方面:简要介绍研究的主要目的和必要的背景知识[1-3],即为什么写这篇论文;总结比较国内、国外的研究现状[1,4],点明领域内尚未解决的问题;提出本研究的切入点,并对研究的方法和内容等进行简单描述;引出预期研究结果及其意义。
引言字数不宜太多,本研究结果与他人研究结果的比较分析应放入讨论部分。
(正文宋体五号)1 材料与方法(黑体小四号)1.1 主要试剂TRIzol,购自××公司;××试剂盒,购自××公司;××染色液、××染色液、××试剂,均购自××公司(写公司官方全称)。
(无固定格式要求,前后一致即可)1.2 主要仪器××仪,××公司产品;××显微镜,××公司产品;××机,××公司产品。
(无固定格式要求,前后一致即可)1.3 实验动物SPF级BALB/c小鼠,雄性,6-8周龄,体重(20±2)g,购自××公司。
1.4 试验方法1.4.1 试验设计将80只BALB/c小鼠随机分为4组,分别为……,每组20只。
××组,……;××组,……;××组,……;××组,……。
写清楚试验采用的设计方法,务必简单明了地表达具体几个处理、几个重复等。
1.4.2 荧光定量PCR检测IL-6、TNF-α基因mRNA相对表达量应用SYBR Green荧光定量PCR检测IL-6、TNF-α基因在小鼠××组织中的相对表达量。
使用Primer 3.0软件设计引物,引物序列见表1,引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
反应体系为……。
反应程序为……。
以GAPDH为内参,采用2-ΔΔCt法计算IL-6、TNF-α基因的相对表达量。
表1 荧光定量PCR引物(黑体小五号,居中)引物名称Primer name 引物序列(5’→3’)Primer sequence产物长度/bpProduct lengthIL-6-F CAGAAGGAGTGGCTAAGGA192 IL-6-R CGTAGAGAACAACATAAGTCAGTNF-α-F CTGTAGCCCACGTCGTAG181 TNF-α-R TTGAGATCCATGCCGTTGGAPDH-F GAGCCAAAAGGGTCATCATCT231 GAPDH-R AGGGGCCATCCACAGTCTTC1.4.3 ELISA检测IL-6、TNF-α含量收集各组小鼠血液样品,3 000r/min离心10min后收集血清,按照ELISA试剂盒说明书操作检测血清中IL-6、TNF-α的含量。
1.4.4 组织病理学检查各组小鼠在麻醉、采血及安乐死后,取肝脏组织,固定于10%中性福尔马林缓冲液,经常规组织脱水、透明、包埋、切片,然后进行苏木素-伊红(H.E.)染色,显微镜下观察并记录病理变化。
1.4.5 免疫组织化学检测参照文献[5]方法进行免疫组化检测,……。
……1.5 统计分析试验结果以“平均值±标准差”方式表示。
采用SPSS 22.0软件对数据进行统计分析,使用××法进行差异显著性检验。
P<0.05表示差异显著,P<0.0表示差异极显著。
2 结果2.1 ××对小鼠××组织中IL-6、TNF-α基因表达的影响IL-6基因荧光定量PCR检测结果如图1所示,对结果进行简单描述。
不同时间点TNF-α基因荧光定量PCR检测结果表明,……,见图2。
图1 小鼠××组织中IL-6 mRNA的表达量Fig. 1 The relative expression of IL-6 mRNA in mice ××不同小写字母表示组间差异显著,P<0.05Different lowercase letters mean significant difference among groups, P<0.05图2 小鼠××组织中TNF-α mRNA的表达量Fig. 2 The relative expression of TNF-α mRNA in mice ××与××A组比较,*:P<0.05,**:P<0.01;下图同Compare to group A, *:P<0.05,**:P<0.01. The same as below2.2 ××对小鼠××组织中IL-6、TNF-α含量的影响IL-6试验结果如图3所示,……。
图3 小鼠××组织中IL-6含量Fig. 3 The IL-6 content in mice ××2.3 ××基因的PCR检测结果通过PCR扩增得到大小为××bp的特异性条带(图4),与预期的片段大小相符。
……。
图4 ××基因的PCR扩增Fig. 4 Amplification of ×× gene by PCRM:DL-2000 DNA相对分子质量标准;1:阴性对照;2:阳性对照;3~4:A组样品××基因片段;5~7:B组样品××基因片段M: DL-2000 DNA marker; 1: Negative control; 2: Positive control; 3~4: ×× gene fragment of group A samples; 5~7: ×× gene fragmentof group B samples2.4 ××对小鼠体重的影响由表2可知,……。
表2 ××对小鼠体重的影响Table 2 Effects of ××on body weight in mice(g, n = 10)组别Group时间Time第1天Day 1第4天Day 4第11天Day 11对照组Control group17.12±0.9817.69±2.01a18.77±0.93模型组Model group17.07±1.4715.72±1.05b15.83±1.67b 高剂量组High-dose group17.01±1.8216.03±1.40b16.11±1.41b低剂量组Low-dose group17.09±1.8815.50±0.96b15.92±1.30b同列数据肩标小写字母不同表示差异显著(P<0.05),字母相同或无标记表示差异不显著(P>0.05);下表同In the same column, the data with different lowercase letter superscripts show significant difference (P<0.05),the data with the same letter or no letter superscript show no significant difference (P>0.05) . The same as the following tables2.5 ××对小鼠血清生化指标的影响由表3可知,……。