浮游藻类监测与分类
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提纲
一 浮游藻类监测 二 浮游藻类分类
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一、浮游藻类的监测
浮游藻类 监测
监测 方法
评价 方法
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断面布设原则
➢ 断面布设的代表性
污染源附近；排污口下游；敏感区域（水源地等）
➢ 与水化学监测断面布设的一致性
同步采样；数据对比；全面评价
➢ 断面布设要考虑水体环境的整体性
对照断面；污染断面；观察断面
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采样频次
➢ 采样频率一般2～4次/年； ➢ 时间以夏秋两季为宜； ➢ 有些湖泊可按丰枯水期采样； ➢根据排污或藻类爆发（如蓝藻爆发状况，水交换频繁 的湖泊，可随时增加采样次数。）
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采样层次
≤2m
0.5m左右深处采集亚表层水样 若透明度很小，下层加取，制成混合样
≤5m 水表面以下0.5、1、2、3和4m等五个水层采样，取定量水样，制混合样
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样品计数（显微镜）
显微镜的校准
将目（测微）尺放入10倍目镜内，应使用刻度清晰成像 （一般刻度面应朝下），将台（测微）尺当作显微玻片标本， 用20倍物镜进行观察，使台尺刻度清晰成像。台尺的刻度代 表标尺上的实际长度，一般每小格0.01mm。转动目镜并移 动载物台，使目尺与台尺平行，并且目尺的边沿刻度与台尺 的0点刻度重合，然后数出目尺10格相当于台尺多少格，用 这个格数去乘0.01mm，其积表示目尺10格代表标本上的长 度多少。用台尺测出视野的直径，按πr2计算视野面积。
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样品沉淀和浓缩
➢ 沉淀和浓缩可以在筒形分液漏斗或直接在采样瓶中进行， 因为一般浮游藻类的大小为几微米到几十微米，再经过碘液 固定后，下沉较快，所以静置沉淀时间一般需用24 ～ 48h。 ➢ 然后用细小玻璃管加乳胶管或小橡皮管以虹吸方式缓慢 地吸去上层的清液，注意不能搅动或吸出浮在表面和沉淀的 藻类。 ➢ 最后留下约20ml时，将沉淀物放入容积为50 ～100ml 的试剂瓶中，试剂瓶事先应精确的在30ml处做好标记，用吸 出的上层清液或蒸馏水冲洗分液漏斗或采样瓶2～3次，一起 放入试剂瓶中，在计数时定容到30ml（转移量大于30ml时可 多次虹吸。
➢ 断面布设的经济性
优化验证；样品及时运输
➢ 断面布设的连续性
长期、连续、可比性数据
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断面布设方法
➢ 河流
平原水网地区一般不布设浮游藻类断面，建议采集着生藻类。
➢ 湖泊水库
入湖（库）口区 湖（库）中心区 湖（库）出口区 湖（库）特殊水区 沿湖（库）边排污口区 湖（库）相对清洁区
若水体是圆形或接近圆形，两岸设置两个相互垂直的采样；狭长 的水域则设置三个相互平行，间隔均匀的断面。
＞5m
深水水体可按3～6m间距设置采样层次，变温层以下的水层可适当少采样； 对透明度较大的深水水体，可按表层、透明度0.5倍处、1倍处、1.5倍处、 2.5倍处、3倍处取样，制混合样
水华期间 表层0.2m、亚表层层0.5m和底层各采一定量水样，制混合样
备注 若需了解浮游植物垂直分布状况，可分层次分别采样，不需混合
用作测量和计数的其他镜头的每一种搭配，也都应作同 样的校准和记录。15样品计数 Nhomakorabea显微镜）
计数框及其使用
一般用容量0.1ml的计数框，计数框的实际长宽度 和每两相邻刻度之间的实际距离，应事先用测微尺准 确测量并记录。注液前，将盖玻片斜盖在计数框上， 将样品按左右平移的方式充分摇匀，迅速吸取0.1ml样 品到计数框中，将盖玻片平旋正位。计数框内应无气 泡，也不应有样品溢出。
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仪器和器具
显微镜、冰箱、有机玻璃采样器、25#浮游生物网、 烧杯、镊子、载玻片、盖玻片、刻度吸管、胶头滴管、 硅橡胶管、乳胶管、量筒50ml、采样瓶50ml和1000ml 若干等。
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采样工具
➢ 定量样品
1000ml、1500ml、2000ml等各种容量和不同深度型 号的有机玻璃采水器。
➢ 定性样品
分类计数必须在200个藻体以上，否则需全片或浓缩计数。 硅藻破壳不计数，藻类计数用画“正”的方式进行。 两片的数值与其平均值之差大于±15%，需进行第三片计数。
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样品计数（显微镜）
结果换算
计算公式：N=[(A/Ac)×(Vw/V)]n 式中： N—每升原水样中浮游植物的数量（个/L）； A—计数框面积（mm2）； Ac—计数面积（mm2）； Vw—原样定容的体积（ml）； V—计数框体积（ml）； n—计数所得的藻类的个数或细胞数。
➢ 定性样品 定性样品一般采样量为20ml（指管容积），加福尔马林
溶液1ml、甘油2ml。为防止样品褪色，可在样品中加1、2滴 饱和硫酸铜溶液。
➢ 对于浮于水样表层的样品（如带气囊的微囊藻）可在 样品中加入适量皂液，以便沉降。
Lugols鲁哥氏液固定液：称取40g碘及60g碘化钾（分析纯），溶
于1000ml纯水中。
25#浮游生物网（孔径为0.064mm，200孔/in，1in＝ 0.0254m）。
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采样量
根据浮游藻类的密度和研究的需要量而定。
➢ 定量样品
一般以1～2L为宜，藻类密度高的采水量可少，密度 低的采水量则要多。
➢ 定性样品
一般水体中沿表层至0.5m拖滤1.5～5.0m3体积。
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样品采集
➢ 定量样品
一般用有机玻璃采水器采样，采水器深入水中，根据刻 度采集不同水层的水样。
➢ 定性样品
用25#浮游生物网在表层至0.5m深处以20～30cm/s的速 度作∞形循回拖动约1～3min。
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样品固定
➢ 定量样品 测定藻类用的水样采样后应立即加以固定以免时间延长样
品变质。固定剂用鲁哥氏液，一般用量为1L水样中加15ml鲁 哥氏液，使水样摇匀即可。
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实验室要求
➢ 前处理室和镜检室两分开。 ➢ 每间实验室面积不低于15平方米。 ➢ 显微镜室需要防潮（湿度不超过85％，否则需要除 湿），防震（工作台振幅不大于2µm，最好加橡胶垫），防 酸雾；镜头需要单独避光、防潮、防尘、防震保存（棕色干 燥器）；需要醒目标志，加窗帘；需要通风设备。 ➢ 实验室内需要配置相应的基础设施，购买相应的仪器 和器具。
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样品计数（显微镜）
计数方法
➢ 计数单位：一个单细胞生物，一个自然群体，都看作一个 单位。藻类个体数亦有以细胞数计。 ➢ 视野计数法：在显微镜（400 ～ 600倍）下观察100个或 200个视野，一般计数两片。 ➢ 长条计数法：选取两相邻刻度从计数框的左边一直计数到 计数框的右边成为一个长条。一般计数三条，即第2、5、8条。