神经干动作电位-实验.
为什么?
当两个刺激脉冲的时间间隔逐渐缩短时,第二个动作 电位如何变化?为什么? 为何要将神经的中枢端放置在靠近刺激电极处?如果 反放会有何结果?
• 神经干由许多神经纤维组成。其动作电位是以膜外记 录方式记录到的复合动作电位
• 如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面,兴 奋波先后通过两个电极处,便引导出两个方向相反的 电位波形,称双相动作电位
双相动作电位
细胞外引导电极 检流计
兴奋区
方法和步骤
制备坐骨神经干标本
1.破坏脑和脊髓 2.剪除躯干上部及内脏 3.剥去皮肤(手及用过的器械用自来水冲洗) 4.分离两腿 5.制坐骨神经干标本
生物信号的采集及 MD2000的使用
生物电信号的采集
程控 生物体
生物 信号
刺激器
换能器
放大器
A/D
微机
程控
换能器
压力换能器 张力换能器
刺激器
刺激方式:单次,连续,定时,串刺激
刺激参数:刺激强度,波宽,频率
神经干动作电位的引 导、传导速度测定和 不应期的观察
动作电位的记录方法
刺激器
输入通道Βιβλιοθήκη +-R1-
Rr1+ R2-
R2+
S
Δt
传导速度测定 υ=
SAC Δt
注意事项
抓取蟾蜍时,禁忌挤压两侧耳部的毒腺,禁止将蟾蜍头部 对着自己及他人,以免其眼后线处分泌毒液射入眼中。 剥皮后须将手及用过的器械洗净,再进行下一步操作 用玻璃分针去除神经周围的结缔组织,避免用力牵拉神经 或用金属器械夹捏神经,以防神经损伤。
连接实验装置
观察项目
引导神经干双相动作电位
观察刺激强度对动作电位幅度的影响 找出阈强度和最大刺激强度 测量动作电位传导速度: v =s/t 观察单相动作电位和不应期 测定不应期条件:双刺激(串数2);间隔↓
动作电位传导速度的测定
Measurement of Conduction Velocity of AP
结果与讨论
双相动作电位图
传导速度
传导速度应为最快的Aα类神经纤维的传导速度,约3040m/s,普通实验条件下测得应为15-30m/s之间
绝对不应期的时程
约相当于峰电位的时程,数ms不等
思考与探讨
实验中所得动作电位是否符合“全或无(all or none)” 的性质?为什么? 两个记录电极之间的神经损伤后,动作电位有何变化?
标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使神经兴奋性稳 定。实验过程中也需经常用任氏液湿润标本,以防影响标 本的机能。
注意事项
神经干要有足够的长度,制成后须放在任氏液( Ringer’s
solution)中浸泡数分钟,用锌铜弓检测标本的活性
一定要将神经干粗端放于刺激电极一侧 (why?) 标本应平直地放在电极上与电极密切接触,保持湿润,但要 用滤纸吸去屏蔽盒中过多的任氏液,以防短路
细胞内记录 (单向动作电位) 细胞外记录 (双向动作电位)
实验目的
掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及 其基本波形的判断和测量。 掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的 测定方法。 观察机械损伤对神经兴奋和传导的影响
• 用电刺激神经,在刺激电极的负极下神经纤维膜内产 生去极化,当去极化达到阈电位,膜上产生一次可传 导的快速电位反转,即动作电位