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粪大肠菌群的测定步骤

粪大肠菌群的测定
1、半个月前配好初、复发酵所需培养液
2、采样时用500ml 广口玻璃瓶分开采样,牛皮纸封口
3、操作
(1) 培养液
初发酵 单倍乳糖蛋白胨培养液:
蛋白胨 10 g
牛肉浸膏 3 g
乳糖 5 g
氯化钠 5 g
蒸馏水 1000ml
调节PH 为7.2—7.4(NaOH )
6%溴甲基紫乙醇溶液 1 ml 充分混匀后 10ml (三倍是5ml )分装于试管中,盖紧塞于蒸气锅中灭菌20min (0.1—0.5kpa ),冷却后于药品储存箱保存。

单月13个地表水(每个水样需10个单倍,5个三倍),2个创业(每个水样需15个单倍)。

共190个(1900ml )单倍,65个三倍(325ml )。

双月10个地表水,2个创业。

共130个(1600ml )单倍,50个三倍(250ml )。

创业的水一个月采两次水样
复发酵 EC 培养液
胰胨 20 g
乳糖 5 g
胆盐三号 1.5 g
磷酸氢二钾 4 g
磷酸二氢钾 1.5 g
氯化钠 5 g
蒸馏水 1000ml
充分混匀后 10ml 分装于试管中,盖紧塞于蒸气锅中灭菌20min (0.1—0.5kpa ),冷却后于药品储存箱保存。

三倍乳糖蛋白胨培养液: 蛋白胨 30 g 牛肉浸膏 9 g 乳糖 15 g 氯化钠 15 g 蒸馏水 1000ml 溴甲基紫乙醇溶液 3 ml
(2)做样
初发酵:
地表水15根管为一个水样。

5根为一组。

第一排为5ml三倍培养液,加10ml水样;第二排为10ml单倍培养液,加1ml水样;第三排为10ml单倍培养液,取1ml水样稀释至10ml后再从中取1ml至装有培养液的试管。

(10、1、0.1的取样量)
创业,每个水样15根单倍。

同上逐级稀释,取样量为0.1、0.01、
0.001ml。

将初发酵管放入培养箱中培养,温度为37℃±0.5℃,时间为24h±2h。

观察:产酸产气为阳性,即变色且有气泡产生,可轻击试管查气泡。

复发酵:
呈阳性的试管进行接种后,做复发酵。

将阳性的试管中溶液接种(接种环)到EC培养液中,放在45℃±0.5℃的水浴锅中培养24h±2h。

水浴锅液面应高于管中液面。

观察:产气(有气泡)则证实为阳性。

记录阳性试管数,查表可得MPN值。

结果表示单位为:个/L。

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