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Akt1基因沉默降低小鼠乳腺癌细胞肺转移能力20页PPT
七、体内原位瘤生长和肺转移试验
实验用8~10周龄的雌性BALB/c小鼠。先将 4T1-Control,4T1-siAkt1-1和4T1-siAkt1-2细胞 在指数增长期时消化下来,用PBS充分清洗后用 DME-10培养基重悬并计数(5x107/ml)将小鼠分为 3组,每组11只。用戊巴比妥钠(50mg/kg体重)麻 醉小鼠,在每只小鼠的第五对乳腺各接种10μ l细 胞。4周后,处死并称取原位瘤重量,观察肺表 面转移结节数,并作统计学分析。实验重复3次 。
Akt1基因沉默降低小鼠乳腺癌 细胞肺转移能力
立项依据
•
Akt1是一种丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,可通过
磷脂酰肌醇3激酶(PI3K)依赖的机制被胞外信号激活
。目前发现Akt有三个家族成员Akt1/PKBα 、Akt2/
PKBβ 、Akt3/PKBγ 。它们的氨基端含有1个血小板
-白细胞c激酶底物同源结构区域(PH)可介导脂质—
MTT法检测4T1-Control,4T1-siAkt1-1和4T1siAkt1-2细胞的增殖能力
4T1-Control ,4T1-siAkt1-1和4T1-siAkt1-2 细胞荷瘤小鼠的原位瘤重量
Transwell法检测4T1-Control, 4T1-siAkt11和4T1-siAkt1-2的细胞迁移能力
蛋白质和(或)蛋白质—蛋白质之间的相互作用。Akt
通过PH区特异性与PI3K的类脂产物磷酯酰肌醇
3,4,5-三磷酸结合募集到细胞膜上,并通过上游磷脂
酰肌醇依赖性激酶1,2(PDK1、PDK2)磷酸化进入活化
状态。激活的Akt重新定位到胞质、核内或细胞内的其
他部位,磷酸化大量的底物蛋白,最终调节细胞的增
实验结果
Akt1干扰载体pLKO.1-Control,pLKO1.1-siAkt1-1 和pLKO.1-siAkt1-2的酶切鉴定电泳图谱
定量PCR检测4T1-control,4T1-siAkt1-1和 4T1-siAkt1-2细胞中Akt1mRNA表达量
免疫印迹检测4T1-Control,4T1-siAkt1-1和4T1siAkt1-2细胞中Akt1蛋白表达量
研究目标和内容
作为一种原癌基因,Akt1在许多人类肿瘤中表达显 著增高,促进肿瘤转移;但也有研究表瘤发生发展过程中的作用,采用RNA干扰技术 沉默了高转移小鼠乳腺癌细胞4T1中Akt1的表达。MTT 法检测发现,Akt1沉默不影响4T1细胞的增殖能力。Transwell法检测证明,Akt1沉默可降低4T1细胞的迁移能 力。与以上结果相一致,Akt1沉默不影响乳腺癌形成原 位瘤的能力,但显著降低其体内肺转移能力。结果表 明,Akt1在小鼠乳腺癌细胞转移过程中发挥重要作用, 并提示Akt1可能成为乳腺癌治疗的靶点。
殖、分化、存活和迁移等。
近年来研究发现,Akt1不但影响肿瘤细胞 的增殖、凋亡,而且对许多肿瘤的侵袭和转移 也有影响。Akt1基因在人胃癌中表达增加;活 化的Akt1促进人类胰腺癌细胞、纤维肉瘤细胞 和成纤维细胞的侵袭能力,但可抑制MDA-MB-2 31细胞的迁移能力。在乳腺癌中也发现Akt1 异常表达和活性改变,并在乳腺癌的转移过程 中发挥重要的作用。降低Akt1水平抑制Erb-2介 导的乳腺癌体内转移;而过表达myr-Akt1可抑 制人乳腺癌细胞的迁移和侵袭能力。Akt1活化 还可促进Erb-2介导的乳腺肿瘤发生但抑制其侵 袭能力。这些结果表明,Akt1在不同的细胞型 或肿瘤的不同发展阶段所起的作用也不同。
计划和方案设计
一、细胞株与培养基 小鼠乳腺癌细胞株4T1 细胞培养用培养基为DME-10培养基 培养环境为37℃培养箱,饱和湿度,5%CO2,0.25%的胰
-酶0.02%EDTA消化传代细胞。 二、Akt1干扰载体的构建
慢病毒载体plko.1-puro质粒与已设计好的干扰序列 Akt1-1、Akt1-2和小鼠已知基因无同源性的DNA干扰序列 为阴性对照(表1)合成的寡核苷酸退火形成双链DNA片断 ,克隆到U6启动子下游的EcoRI和AgeI酶切位点(EcoRI和 AgeI酶切位点之间原先存在约1800bp的无关DNA片断), 转入大肠杆菌DH5α 。EcoRI和AgeI双酶切筛选得到阳性克 隆pLKO.1-siAkt1-1,pLKO.1-siAkt1-1-2和pLKO.1Control,并测序验证。
三、Akt1沉默细胞株的构建:用磷酸钙法转染HEK293T细 胞并经过嘌呤霉素筛选获得稳定的细胞株4T1-siAkt11、4T1-siAkt1-2和对照细胞株4T1-control.
四、定量PCR和免疫印迹分析 五、MTT法检测细胞增殖活性:分别将对数生长期的3组
乳腺癌细胞4T1-Control,4T1-siAkt1-1和4T1-siAkt12用0.25%胰酶消化,DMEM配制成单细胞悬液,接种于96 孔板中,每组6孔,每孔约1×104个细胞,体积100μ l, 置于5%CO2,37℃培养48h。每孔加入20μ l MTT溶液 (5mg/ml),37℃孵育4h,吸出培养基上清,150μ lDMSO 充分溶解。酶标仪测定吸光度(A)(测定波长570nm,参 比波长630nm)实验重复3次。
六、Transwell法测定细胞迁移力
实验中采用6.5mm直径,10μ m厚度,8μ m孔径的 聚碳酸酯多孔滤膜。取对数生长期细胞,胰酶EDTA消化收集细胞,离心(1000r/minx5min)弃上 清,血清DMEM洗涤1次,加入无血清DMEM,细胞 计数,用无血清培养基重悬细胞至5x105个细胞 /ml;上室每孔加入10μ l细胞悬液,下腔室中加 入600μ l含Fn的培养基,37℃培养箱中培养24h ;取出Transwell并用PBS洗3次,5%戊二醛4℃ 固定0.5h;PBS洗3遍,加入结晶紫(0.1%)室温 染色0.5h;PBS洗3遍,用脱脂棉擦去上表面细 胞,显微镜下观察,取5个视野照相,计数记录 。实验重复至少3次,结果相似。