血片染色
两种染色方法:
●吉氏染色法
1. 染色原液配制 2. 门诊快染、慢染 3. 成批染色和溶血染色
●
瑞氏染色法
WHO推荐使用吉氏染色法
吉氏染液(原液)的配置
吉氏染粉 (Azure B type) 甘油 (纯) 甲醇 (纯) 5g 250ml 250ml
●吉氏粉放入研钵中，加少量甘油充分研磨, 然后边加边磨，
三日疟
P.malariae
●遍及热带和亚热带地区，特别是东、西非洲，圭亚那及 印度部分地区，呈片状、块状分布 ●三日疟在我国非常少见，只在南方广西有过散在报告
卵形疟 （蛋形疟）
P.ovale
●主要分布非洲。太平洋地区、缅甸、东南亚有散在报告 ●在我国已基本消灭
原虫镜检
血细胞


红细胞 血小板 白细胞（中性粒细胞、嗜酸性粒细胞、嗜 碱性粒细胞、淋巴细胞和单核细胞）
三日疟（P.malariae）
诊断要点
红细胞不涨大或略小 环状体中等大小，核较大 ，胞浆粗厚 胞浆不活跃呈带状形成熟 滋养体呈菊花状,内含6-12 个裂殖子
雌雄配子体小于正常红细
胞，色素呈深褐色 常可查见各阶段的疟原虫
卵形疟（P. ovale ）
鉴定要点
1. 红细胞正常或 略涨大
者白细胞数的情况下，以每微升血8 000个白细 胞计数, 由此计算出每微升血液疟原虫密度为：
135（计数的疟原虫数）÷200（计数的白细胞）x 8000（每微升血白细胞数） =5400 / μl 答：该患者的疟原虫密度为5400 / μl。
半定量计数法
用厚血膜每个视野中所观察到疟原虫的平均数粗略地估 算出疟原虫密度。此方法将密度分为6级： 1.全厚血膜查见疟原虫数在10个以内，记录实际数字 2.全厚血膜查见疟原虫数在10个以上，但平均每个视野 不到1个虫，记录“少” 3.平均每个视野1～5个虫，记录“＋” 4.平均每个视野6 ～ 10个虫，记录“++” 5.平均每个视野11 ～ 100个虫，记录“+++ ” 6.平均每个视野100个虫以上，记录“++++ ”。 如：Pv R+T++S5G少 这种方法简便，缺点是计数的疟原虫数受血膜厚薄 影响，只能定性，不宜作定量分析。
疟原虫厚、薄血膜镜检优缺点
厚血膜
血量多，面积小，原虫
优点
薄血膜
经甲醇固定，红细胞完 整，原虫形态改变不大，
检出率高
原虫易于辨认
缺点
原虫在干燥过程中皱缩， 血量比厚血膜少许多， 红细胞消失，原虫变形较 但面积是厚血膜的8-10 倍。检查费时，原虫检 大，原虫鉴定困难
出率较低
用途 用于疟疾病人检查 原虫虫种、虫期鉴定及 初学者教学标本
恶性疟
P.falciparum
● 分布热带、亚热带，是非洲的重要疾病 ● 我国流行区域为云南省和海南省 ● 四种疟原虫中致病力最强，无免疫力者 感染后出现急性症状,不及时治疗可危及 生命（脑型疟）
间日疟
●
P.vivax
遍布全球温带地区及大片热带地区。在热 带非洲，特别是西非则很少见
● 间日疟原虫分布于我国大部分地区,主要是中部地区 ● 病程良性, 有复发
时间越久，厚血膜越不易脱血，染色效果也差。
疟原虫镜检
● 疟原虫厚、薄血膜镜检优缺点 ● 疟原虫密度计数方法 ● 人体四种疟原虫的形态特征
原虫镜检---金标准
●当前分子生物学、血清学技术快速发展, 但是厚薄血片的检查仍被认为是不可替 代的确诊疟疾的 “金标准”
●显微镜检查是唯一可查到原虫实体并鉴 别4种人体疟原虫


成批血片染色
将已固定薄血膜的血片插入染色缸，倒入3%吉氏染 液（3毫升吉氏染色液加缓冲液或净水97毫升，混匀） 浸没血片，染色30分钟。 （如染液稀释液不合标准时，得酌情增减染色时间 和浓度），然后用清水轻轻将染液漂洗干净，将染 色片插于晾干板上晾干，包装，待镜检。
厚血膜溶血染色
放置多时未染色的血片（3天以上，薄片已用甲 醇固定），染色之前，须在厚血膜上用清水进 行溶血，待血膜全部溶解后用3%-5%吉氏染色液 染色30分钟。然后用清水漂洗干净,晾干。
采血部位：耳垂或无名指， 取血方法：通常在耳垂取血， 先用75%酒精棉球消毒取血部位 ，待酒精干后，用左手拇指和 食指紧捏耳垂上方或无名指指 尖，右手持消毒针迅速刺入皮 肤，不宜过深或过浅。然后用 右手中指轻轻挤压出血。厚血 膜血量约一粒米大小,薄血膜血 量为厚血膜的一半或1/3。
第四步：血片制作
白细胞原虫密度计数法

从血膜的左上角开始，横向。 计数1个视野后，每次间隔5个视野,再计数。
厚血膜
白细胞原虫密度计数方法
× 不需要计数的视野 ● 需要进行白细胞、疟 原虫计数的视野 如果该视野无原虫，则 计数白细胞数
● 看到第一个原虫开始 计数
白细胞疟原虫计数法
●例如 计数200 WBC中有135个疟原虫，在不知患
质量好的染色
显微镜下核呈红色,胞浆呈蓝色，薄血膜平整，红细胞单层排列 如果血片偏红,说明染液偏酸性 如果血片偏蓝,说明染液偏硷性
偏 酸
外观吉氏染色血片 标 准
偏碱
染色质量影响因素
配置完吉氏原液时必须过滤除去杂质颗粒，有助
于提高镜检质量； 染液稀释后使用时间：原液必须临用时稀释，随 配随用； 染液的稀释浓度； 染色时间。
疟原虫检验技术
-血片制作、染色及疟原虫形态鉴别
黔东南州疾控中心检验科 潘雪雪
寄生人体的四种疟原虫
间日疟原虫 [P. vivax，P.v] 恶性疟原虫 [P．Falciparum,P.f] 三日疟原虫[P．Malariae,P.m] 卵形疟原虫[P．Ovale,P.o] 我国主要是间日疟原虫和恶性疟原虫；另 二种少见，近年偶见国外输入病例。 其它疟原虫 诺氏疟原虫(Plasmodium nowlesi)
直至甘油加完，将研磨的染液倒入棕色瓶中，在 研钵中加 入少许甲醇清洗研钵，然后倒入棕色瓶中，再放入甲醇清洗 ，反复数次，直至甲醇用完。盖好瓶盖，将染液充分摇匀， 置于室内，每天晃动数分钟，存放一周后经过滤即可使用。 保存时间越长染色效果越好。
●整个染色液配制时间不能少于5个小时
血片的染色
染色用水和冲洗用水配制


细胞浆：蓝色或深蓝色，随着虫体发育长 大，细胞浆逐渐增多； 核：呈鲜红色，呈圆形或椭圆形。核的结 构致密，只有在个别发育阶段较为疏松， 例如间日疟原虫雄配子体的核。 核
斑点
疟原虫的基本形态特征
疟色素：不着色，颜色和颗粒的形状，因疟原虫种 类而异，疟色素在虫体内散在分布或聚集成团块。 间日疟原虫：呈短棒状，黄褐色； 恶性疟原虫：呈细砂状，黑褐色； 三日疟原虫：呈砂粒状，深褐色； 卵形疟原虫：与间日疟原虫相似。
疟原虫密度计算
计算疟原虫密度的三种方法： ● 白细胞原虫密度计数法 (厚血膜 WHO) 优点：可作为定性和定量分析 ● 半定量计数法 (厚血膜) 优点：方法简便 缺点：只能定性，不宜作为定量分析 ● 红细胞感染密度计算法 (薄血膜)
白细胞原虫密度计数法




镜检厚血膜，按视野顺序，记录200个白细胞中的 疟原虫数，如果原虫密度较低（200个白细胞中小 于100个疟原虫），可增加白细胞，计数500个。 密度单位:原虫数/μl 计算公式：疟原虫数 ÷ 计数的白细胞数 × 患者 每微升血白细胞数 = 疟原虫数/μl血。 如果不知患者的白细胞数，则每微升血以8000个 白细胞计数(国际标准) 。

常用中性的蒸馏水或经煮沸过滤的冷开水 用pH7.0～pH7.2的缓冲液。

血片染色
薄血膜的固定
厚血膜充分干燥, 用甲醇固定薄血膜， 平放待干

（要点：甲醇不能 触碰到厚血膜）
血片染色

操作1 （快染） 量筒内 量2ml缓冲液(PBSPH7.0) 或净水，直接滴加吉氏原 液7滴，混匀，滴入待染标 本的厚薄血膜上，染色 10min，清水缓缓冲洗，晾 干（血膜朝内面）镜检。 操作2 (慢染) 量筒 内量2ml缓冲液或净水， 再滴加吉氏原液4滴，混匀 ，滴入待染标本上，染色 30min。清水缓缓冲洗，晾 干镜检。
疟色素
恶性疟（P.falciparum）
鉴定要点
红细胞不涨大 环状体纤细, 常有多 重感染，环状体内 可有2个核 环状体可贴在红细 胞边缘 除环状体，配子体 外没有其他发育期 配子体呈新月形或 腊肠形 成熟裂殖体约含1632个裂殖子，排列 不规则 可出现茂氏点
21. A member of the UN forces in East Timor. Presented with high temperature.
厚血膜 用推片的一角，从取 血部位刮取约4微升血量 （相当于火柴头大小）， 使血滴与平置的载玻片接 触，再由里向外一个方向 旋转，转2~4圈，涂成直 径0.8~1厘米大小圆形厚 血膜 薄血膜再取一小滴血.将血置 于第一张玻片离厚血膜适 当远的地方.将 推片的边 缘紧贴载玻片，轻轻上下 移动，使血液沿边缘散开， 然后匀速地向前推进，形 成薄而平铺的薄血膜
红细胞


红细胞是双面凹 的圆饼状 边缘较厚，而中 间较薄
血小板
5 1 3
4
各种血细胞模式图
1.红细胞 2.嗜酸性粒细胞 3.嗜碱性粒细胞
2 7 6
4.中性粒细胞
5.淋巴细胞 6.单核细胞 7.血小板
疟原虫的基本形态特征


疟原虫基本构造为细胞质(胞浆)、核和疟色素； 原虫：经吉氏或瑞氏染色：核呈红色，胞质呈 兰色，疟色素为本色；
薄血膜
厚血膜
制片过程图示
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