核酸电泳相关试剂、缓冲液的配制方法50×TAE Buffer (pH8.5)组份浓度 2 M Tris-醋酸，100 mM EDTA配制量 1 L配制方法3.加入57.1 ml的乙酸，充分搅拌。

4.加去离子水将溶液定容至l L后，室温保存。

10×TBE Buffer (pH8.3)组份浓度 890 mM Tris-硼酸，20 mM EDTA配制量 1 L配制方法3.加去离子水将溶液定容至l L后，室温保存。

10×MOPS(3-吗啉基丙磺酸)Buffer组份浓度 200 rnM MOPS，20 mM NaOAc，10 mM EDTA配制量 1 L配制方法 1.称41.8 g MOPS，置于1 L烧杯中。

2.加约700 ml DEPC处理水，搅拌溶解。

3.使用2 N NaOH调节pH值至7.0。

6.用0.45 m滤膜过滤除去杂质。

7.室温避光保存。

注：溶液见光或高温灭菌后会变黄。

变黄时也可使用，但变黑时不要使用。

溴乙锭 (10 mg/ml)组份浓度 10 mg/ml溴乙锭配制量 100 ml配制方法 1.称量1 g溴乙锭，加入到100 ml容器中。

2.加入去离子水100 ml，充分搅拌数h完全溶解溴乙锭。

3.将溶液转移至棕色瓶中，室温避光保存。

4.溴乙锭的工作浓度为0.5 g/ml。

注意：溴乙锭是一种致癌物质，必须小心操作。

Agarose凝胶配制方法 1.配制适量的电泳及制胶用的缓冲液(通常是0.5×TBE或1×TAE)。

2.根椐制胶量及凝胶浓度，准确称量琼脂糖粉，加入适当的锥形瓶中。

3.加入一定量的电泳缓冲液(总液体量不宜超过锥形瓶的50%容量)。

注：用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须统一。

4.在锥形瓶的瓶封上保鲜膜，并在膜上扎些小孔，然后在微波炉中加热熔化琼脂糖。

加热过程中，当溶液沸腾后，请戴上防热手套。

小心摇动锥形瓶。

使琼脂糖充分均匀熔化。

此操作重复数次，直至琼脂糖完全熔化。

必须注意，在微波炉中加热时间不宜过长，每次当溶液起泡沸腾时停止加热，否则会引起溶液过热暴沸，造成琼脂糖凝胶浓度不准，也会损坏微波炉。

熔化琼脂糖时，必须保证琼脂糖充分完全熔化，否则，会造成电泳图像模糊不清。

5.使溶液冷却至60℃左右，如需要可在此时加入溴乙锭溶液(终浓度0.5 µg/ml)。

并充分混匀。

注：溴乙锭是一种致癌物质。

使用含有溴乙锭的溶液时，请戴好手套。

6.将琼脂糖溶液倒入制胶模中，然后在适当位置处插上梳子。

凝胶厚度一般在3~5 min之间。

7.在室温下使胶凝固(大约30 min~1 h)，然后放置于电泳槽中进行电泳。

注：凝胶不立即使用时，请用保鲜膜将凝胶包好后在4℃下保存，一般可保存2~5天。

琼脂糖凝胶浓度与线形DNA的最佳分辨范围6× Loading Buffer(DNA电泳用)组份浓度配制量 500 ml配制方法3.加入180 ml的甘油(Glycerol)后，使用2 N NaOH调节pH值至7.0。

4.用去离子水定容至500 ml后，室温保存。

10 × Loadlng Buffer(RNA电泳用)组份浓度配制置配制方法3.加入5 ml的甘油(Glycerol)后，充分混匀。

4.用DEPC处理水定容至10 ml后，室温保存。

四、核酸、蛋白质杂交用相关试剂、缓冲液的配制方法20×SSC组份浓度 3.0 M NaCl，0.3 M Na3citrate·2H2O(柠檬酸钠)配制量 1 L配制方法 1.3滴加14 N HCl，调节pH值至7.0后，加去离子水将溶液定容至1 L。

4.高温高压灭菌后，室温保存。

20×SSPE Buffer组份浓度 3.0 M NaCl，0.2 M NaH2PO4，0.02 M EDTA配制量 1.L配制方法3.加NaOH 调节pH 值至7.4(约6.5 ml 的10 N NaOH)。

4.加去离子水将溶液定容至l L 。

5.高温高压灭菌后，室温保存。

50 X Denhardt’S 溶液组份浓度 配制量500 ml 配制方法 1.称量下列试剂，置于500 ml 烧杯中。

2.加去离子水约400 ml ，充分搅拌溶解3.加去离子水将溶液定容至500 ml 。

4.用0.45µm 滤膜过滤后，分装成每份25 ml 。

5.-20℃保存。

0.5 M 磷酸盐Buffer组份浓度 0.5 M Na2HPO 4。

配制量 l L配制方法 1.称量134 g Na 2HPO 4·7H 2O 置于l L 烧杯中。

2.加入约800 ml 的去离子水充分搅拌溶解。

3.加入85%的H 3PO 4(浓磷酸)调节溶液pH 值至7.2。

4.加去离子水定容至1 L 。

5.高温高压灭菌后，室温保存。

Salmon DNA (鲑鱼精DNA)组份浓度 10 mg/ml Salmon DNA配制量 约100 ml配制方法 1.称取鲑鱼精DNA 2 g 置于500 ml 烧杯中，加入约200 ml 的TE Buffer 。

2用磁力搅拌器室温搅拌2~4 h ，溶解后加入4 ml 的5 M NaCl ，使其终浓度为0.1 M 。

3.用苯酚和苯酚/氯仿各抽提1次。

4.回收水相溶液后，使用17号皮下注射针头快速吸打溶液约20次，以 切断DNA 。

5.加入2倍体积的预冷乙醇进行乙醇沉淀。

6.离心回收DNA 后，溶解于100 ml 的去离子水中。

测定溶液的OD 260值。

7.计算溶液的DNA 浓度后，稀释DNA 溶液至10 mg/ml 。

8.煮沸10min 后，分装成小份(1 ml/份)。

-20℃保存。

9.使用前在沸水浴中加热5min 后，迅速冰浴冷却。

DNA 变性缓冲液组份浓度 1.5 M NaCl ，0.5 M NaOH配制量 1 L配制方法3.加去离子水将溶液定容至l L 后，室温保存。

预杂交液/杂交液 (DNA 杂交用)组份浓度配制置 100 ml配制方法 1.称量下列试剂，置于200 ml 烧杯中。

2.充分混匀后，使用0.45 µm 滤膜滤去杂质后使用。

预杂交液/杂交液(RNA 杂交用)组份浓度配制量 100 mL配制方法 1.称量下列试剂，置于200 ml 烧杯中。

2.充分混匀后，使用0.45µm 滤膜滤去杂质后使用。

膜转移缓冲液(Western 杂交用)组份浓度 39 mM Glycine ，48 mM Tris ，0.037%(W/V)SDS ，20%(V/V)甲醇 配制量 1 L配制方法3.加去离子水将溶液定溶至800 ml 后，加入200 ml 的甲醇。

4.室温保存。

TBST Buffer(Western 杂交膜清洗液)组份浓度 20 mM Tris-HCl ，150 mM NaCl ，0.05%(V/V)Tween 20配制量 1 L配制方法3.加入0.5 ml Tween 20后充分混匀。

4.加去离子水将溶液定容至l L 后，4℃保存。

封闭缓冲液(Western 杂交用)组份浓度 5%(W/V)脱脂奶粉/TBST Buffer配制量 100 ml配制方法 1.称5 g 脱脂奶粉加入到100 ml TBST Buffer 中，充分搅拌溶解。

2.4℃保存待用(本封闭液应该现配现用)。

五、实验室常用培养基的配制方法Ampicillin(氨卡青霉素)(100 mg/ml)组份浓度 100 mg/ml Ampicillin配制量 50 ml配制方法 1.称量5 g Ampicillin置于50 ml离心管中。

2.加入40 ml灭菌水，充分混合溶解后，定容至50 ml。

3.用0.22 µm过滤膜过滤除菌。

4.小份分装(1 ml/份)后，-20℃保存。

IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷)(24 mg/ml)组份浓度 24 mg/mL IPTG配制量 50 mL配制方法 1.称1.2 g IPTG置于50 ml离心管中。

2.加入40 ml灭菌水，充分混合溶解后，定容至50 ml。

3.用0 22 µm过滤膜过滤除菌。

4小份分装(1 ml，份)后，-20℃保存。

X-Gal (20 mg/ml)组份浓度 20 mg/ml X-Gal配制量 50 ml配制方法 1.称量l g X-Gal置于50 ml离心管中。

2.加入40 ml DMF(二甲基甲酰胺)，充分混合溶解后，定容至50 ml。

3.小份分装(1 ml/份)后，-20℃避光保存。

LB培养基组份浓度 1%(W/V)Tryptone(胰蛋白胨)，0.5%(W/V)Yeast Extract(酵母提取物)，1%(W/V)NaCl配制量 1 L配制方法3.滴加5 N NaOH(约0.2 m1)，调节pH值至7.0。

4.加去离子水将培养基定容至1 L。

5高温高压灭菌后，4。

C保存。

LB/Amp培养基组份浓度配制量配制方法3.滴加5 N NaOH(约0.2 mL)。

调节pH 值至7.0。

4.加去离子水将培养基定容至1 L 。

5.高温高压灭菌后，冷却至室温。

6.加入1 ml Ampicillin(100 mg/ml)后均匀混合。

7.4℃保存。

TB 培养基组份浓度配制量 1.L配制方法 1.配制磷酸盐缓；中液(0.17 M KH 2PO4，0.72 M K 2HPO 4)100 ml 。

溶解2.31 g KH 2PO 4和l2.54 g K 2HPO 4于90 ml 的去离子水中，搅拌溶解 后，加去离子水定容至100 ml ，高温高压灭菌。

4.加去离子水将培养基定容至1 L 后，高温高压灭菌。

5.待溶液冷却至60℃以下时，；加入100 ml 的上述灭菌磷酸盐缓冲液。

6.4℃保存。

TB/Amp培养基组份浓度配制量配制方法 1.配制磷酸盐缓冲液(0.17 M KH2PO4，0.72 M K2HPO4)100 ml。

溶解2.31 g KH2PO4,和12.54g K2HPO4于90 ml的去离子水中，搅拌溶解后，加去离子水定容至100 ml，高温高压灭菌。

4.加去离子水将培养基定容至l L后，高温高压灭菌。

5.待溶液冷却至60℃以下时，加入100 ml的上述灭菌磷酸盐缓冲液。

6.均匀混合后4℃保存。

SOB培养基组份浓度配制量配制方法 1.配制250 mM KCl溶液。

在90 ml的去离子水中溶解l.86 g KCl后，定容至100 ml。

2.配制2 M MgCl2溶液。

在90 ml去离子水中溶解19 g MgCl2后，定容至100 ml，高温高压灭菌。

5.量取10 m1 250 mM KCl溶液，加入到烧杯中。

6.滴加5 N NaOH溶液(约0.2 m1)，调节pH值至7.0。

7.加入去离子水将培养基定容至l L。