• 在静脉给药时，先根据小鼠的大小选择合适的 固定器，打开鼠筒盖，把小鼠放在里面，只露 出尾巴；或者用倒放的烧杯将鼠扣住，只露出 尾巴并压住。
二、大鼠的抓取与固定
• 抓取方法：4~5周龄以内的大鼠同小鼠；周龄 较大的大鼠其尾部皮肤容易被剥脱，所以用左 手从背部中央到胸部捏起来抓住。抓取时最好 带防护手套，但手套不宜过厚。
小白鼠
大白鼠 豚鼠 兔 猫 蛙
最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头
1ml 9(钝头) 1ml 静脉切开针 3ml 静脉切开针 20ml 10号导尿管 20ml 10号导尿管 淋巴囊注射
最大注射量
猴子的投药
助手抓住和固定猴子。用手夹住猴子的两侧颊部，使嘴张开。
三、实验动物编号与标记方法
（一）染色法： 1、单色涂染法：在每组动物不超过l0只 或一个实验不超过40只的情况下适用。 实验动物：大鼠、小鼠。 常用染色剂：3-5％苦味酸溶液， 可染成黄色。
方法步骤： (1)涂染原则：从左到右、从上到下。 (2)左前肢为l号、左侧腹部2号、 左后肢3号。 (3)两耳后部4号、背中部5号、 后肢背部6号。 (4)右前肢7号、 右侧腹部8号、 右后肢9号。 (5)尾巴根为10号。 （6）额部为20号
一、动物实验室的选择
1.根据实验目的选择合适的实验室及饲养 室。 2.动物实验室要与实验动物同等级别。 3.饲养室应符合实验动物的生活习性及国 家实验动物设施各项标准。
二、实验动物的购买
1.应购买有实验动物生产供应许可证的单 位所生产繁殖的实验动物，并应索取相 应实验动物的质量合格证明。 2.如果从外地购买的动物，应考虑运输中 的各种因素对实验动物的影响，并应查 阅运输检疫证明。 3.购买的动物需要经过3-7天的隔离检疫、 观察。
2-5
5-15 3-10
常用实验动物的最大给药量和使用针头规格
动物名称 项 目 灌 胃 皮下注射 0.4ml 5(1/2) 1ml 6 1ml 6(1/2) 2ml 6(1/2) 20ml 7 肌肉注射 0.4ml 5(1/2) 0.4ml 6 0.5ml 6(1/2) 2ml 6(1/2) 2ml 7 1ml/只 腹腔注射 1ml 5(1/2) 2ml 6 4ml 7 5ml 7 5ml 7 静脉注射 0.8ml 4 4ml 5 5ml 5 10ml 6 10ml 6
送往实验室或手术室。
第三节、实验动物的给药与去毛
• 一、摄入法给药 • 二、注射法给药 • 三、去毛
一、摄入法给药
• 1.自动口服法：将药物放入饲料或饮水中，让 动物自动摄入，方法简单不费工夫，也不会给 动物造成损伤。但很难掌握给药量，有时药物 在常温下还会分解。这种方法一般适用于动物 疾病的防治、药物的毒性观察、某些与食物有 关的人类疾病动物模型的复制等。 • 2.强制灌胃给药：就是用灌胃器将药品直接强 制灌入胃内。这种方法能准确掌握给药量、给 药时间，并能发现和记录症状出现的时间及经 过。缺点是费时、同时给动物带来一定的损伤 和心理影响。因此，如果操作技术熟练对动物 的不良影响就可以减少一些。
2、双色涂染法： 在每组动物不超过100只的情况下 适用。 实验动物：大鼠、小鼠。 常用染色剂： (1)3-5％苦味酸溶液，可染成黄色。 ——作为“个”位数。 (2) 0.5%中性红或品红溶液，可染 成红色。——作为“十”位数。
方法步骤： (1) 用两种颜色同时进行染色标记。 (2) 用苦味酸(黄色)染色标记作为个 位数，个位数的染色标记方法同单 色涂染法。 (3) 用品红(红色)染色标记作为十位 数，
三、豚鼠的抓取与固定
• 抓取方法：抓取幼小豚鼠时，用手捧起来；成 熟的大豚鼠，用手大把抓起胸肋部即可。注意 不能粗野，更不能抓取腰腹部，这样容易造成 肝破裂而死亡。 • 手固定法：⑴将左手的食指和中指放在豚鼠颈 背部两侧，拇指和无名指放在肋部，分别用手 指夹住左右前肢抓起来。⑵反转左手，用右手 的拇指和食指夹住右后肢，用中指和无名指夹 住左后肢是豚鼠整体伸直成一条直线。⑶一个 人固定操作时，坐在椅子上，用右手拿着豚鼠 的后肢夹在两腿之间，用大腿代替右手夹住。 • 手术固定法：同大、小鼠。
• ⑴大、小鼠、豚鼠的灌胃法：左手抓住鼠背颈部 皮毛将动物固定，右手持灌胃器，将灌胃针从口 腔插入，沿上颚壁插入食道，使其前端达到膈肌 水平，为防止插入气管，应回抽注射器针栓，如 无空气被抽回，即可将药液注入。小鼠进针约 3~4cm、大鼠、豚鼠为4~6cm，常用灌胃量小鼠 为0.2~1.0ml、大鼠为1~4ml、豚鼠为1~5ml。 • ⑵兔、犬、猫的灌胃法：先固定动物，然后将开 口器固定在动物口中，压住舌头，然后将灌胃管 从开口器小孔插入食道，将另一端浸入水中，如 有气泡逸出，说明误入气管需拔出重插。插好后 将药液推入。为避免药液残留需注入5ml生理盐 水。兔、猫进针为15cm左右，犬为20cm左右。一 次耐受量兔为80~150ml，犬为200~500ml。
豚 鼠
大 鼠
家 兔
猫
犬
• 3.直肠给药：多用于家兔，将药物通过肛门直 接注入动物直肠内，经直肠壁吸收，注意不要 误入阴道。
二、注射法给药
• 1.皮内注射：将药液注入皮肤的表皮与真皮之 间。用于接种、过敏实验、观察皮内反应及皮 肤血管的通透性等。方法为脱毛消毒→刺入皮 内→向上挑起稍退一些针后再稍刺入→注入药 液。 • 2.皮下注射：用左手拇指与食指轻轻捏起动物 皮肤，右手持针将其刺入皮下，如果针头易摆 动证明已在皮下，可推进药液，拔针后轻按针 孔片刻防止药液逸出。小鼠一般在背部、大鼠 在背颈部或侧下腹部、豚鼠在大腿内侧或背部、 兔在背部或耳根部、猫犬在大腿外侧。
先用手掌迅速扣住鼠背。
抓住其肩胛上方，以拇指和食指环握颈部， 中指和无名指轻轻扣住胸廓。
抓住其肩胛上方，以拇指和食指环握颈部， 中指和无名指轻轻扣住胸廓。
或像抓取大鼠一样抓住双耳和颈背部皮肤。
或像抓取大鼠一样抓住双耳和颈背部皮肤。
另一只手托住臀部。
另一只手托住臀部。
• 注意：豚鼠较为胆小易惊，不宜强 烈刺激和受惊，所以在抓取时，必 须稳、准和迅速；也不能单纯抓取 背腹部。
用镊子将药片送到猴子的舌跟部。
投药完毕，准备闭合猴子嘴巴。
用手将猴子的下巴向上轻轻一拍。猴子自然会将药片吞咽下去。
各种动物一次灌胃能耐受的最大容积
动物种类 小 鼠 体重（g） ＞30 25~30 20~24 ＞300 250~300 ＞300 250~300 200~249 100~199 ＞3500 2500~3500 2000~2400 ＞3000 2500 ~3000 10000~ 15000 最大容积（ml） 1.0 0.8 0.5 6.0 4.0~5.0 8.0 6.0 4.0~5.0 3.0 200 150 100 100~150 50~80 200~500
几种动物不同给药途径的常用注射量（毫升）
注射途径 腹 腔 小鼠 0.2-1.0 大鼠 1-3 豚鼠 2-5 兔 5-10 狗 5-15
肌
静 皮
肉
脉 下
0.1-0.2
0.2-0.5 0.1-0.5
0.2-0.5
1-2 0.5-1.0
0.2-0.5
1-5 0.5-2
0.5-1.0
3-10 1-3
大、小鼠和豚鼠的灌胃
用输血针头 或小号腰穿 针头，将其 尖端斜面磨 平，用焊锡 在针尖周围 焊一圆头， 即成灌胃针 。或购买现 成的灌胃针 。
• 灌胃时将针接在注射器上，吸 入药液。 • 左手抓住鼠背部及颈部皮肤将 动物固定。体位为头高尾低。
右手持注 射器，将 灌胃针插 入动物口 中，沿口 腔顶壁和 咽后壁徐 徐插入食 道。
（4）左前肢为10号、 左侧腹部20号、 左后肢30号， 两耳后部40号、 背部50号、 后肢背部60号， 右前肢70号、 右侧腹部 80号、 右后肢90号 第100号不作染色标记。
（二）穿耳孔法
用专用耳空器在动物耳朵不同部位打一小孔 或缺口表示一定号码的方法，原则是：左耳代表 十位，右耳代表个位。实验动物：兔、犬、猪 （三）标牌法 一般挂在动物的颈部、耳朵、脚上或 实验动物：犬、猴 （四）烙印法 （五）剪毛法
按住兔子的双耳和颈背部。
一只手抓住兔子双耳和颈背部的毛皮提起。
然后另 一只手 托其臀 部，让 其体重 的大部 分集中 在这一 只手上 。
注意：
不能单纯抓双耳或抓提背腹部的毛皮。
• 固定器固定法：耳静脉给药或采血时用盒式固 定法；从颈动脉采血或手术实验时用台式固定 法。 • 盒式固定法：把兔子放在盒子里，只露出头部， 用转扭拧固定器固定家兔。 • 台式固定法：将麻醉的兔子仰卧，用纱布条依 次将四肢捆绑固定于固定台的两侧，然后把头 部放在金属制的首伽和咀环上固定。
第二节、实验动物的抓取与固定
• • • • • 一、小鼠的抓取与固定 二、大鼠的抓取与固定 三、豚鼠的抓取与固定 四、家兔的抓取与固定 五、猴子的抓取与固定
一、小鼠的抓取与固定
• 抓取方法：用右手拇指和食指捏住尾部中段提 起，如果只想移动小鼠，就用两手把它捧起来。 • 手固定法：将右手捏起的小鼠放在笼盖上，用 右手捏其尾部中段，在小鼠向前爬的一瞬间， 用左手的拇指和食指捏住颈背部皮肤，再翻转 左手，将小鼠置于左手掌心中，右手拉住小鼠 尾部，再用左手小指和无名指压住小鼠尾根部 使小鼠整个呈一条直线。固定时注意，过分用 力会使小鼠颈椎脱臼，若用力过轻头部能反转 过来咬伤实验者的手。这种固定方法是灌胃给 药和腹腔注射给药常用的方法。
动物实验技术
Laboratory Animals
实验动物基本操作技术
• • • • • • 第一节、动物实验前的准备 第二节、实验动物的抓取与固定 第三节、实验动物的给药与去毛 第四节、实验动物的麻醉 第五节、实验动物血液、体液的采集 第六节、实验动物的安乐死