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动物实验的基本技术和方法


大小鼠灌胃注意点 1. 用灌胃针。 2. 从嘴角处插入,到达咽部后 改变灌胃针的方向,使其与 食管的走向一致,然后顺利 插入。 3. 成年大鼠由于体型较大,不 易保定。办法:
大小鼠灌胃
1)一人保定,一人灌胃
2)操作者抓取后,将大鼠尾部按 在自己的胸部,达到固定尾 部的目的,然后灌胃。 灌胃量:小鼠0.2-0.4ml/10克, 大鼠1.0ml/100克
2. 3. 4. 5.
剪耳(打孔)法:啮齿类小动物 号码钳法:适用于兔、犬等大动物 耳牌法:适用于羊、牛等大家畜 电子芯片植入法:
四、动物被毛的去除方法
1. 剪毛法:用弯头剪逆毛方向剪 适用于各种实验动物 2. 拔毛法:常用于兔的耳缘静脉注射 3. 剃毛法:剃须刀、手术刀 适用于大动物 4. 脱毛法:脱毛剂
(二)动物实验分组设计的基本类型 1.完全随机化设计 2.按体重分层随机区组设计 3.配对设计
(二)按体重分层随机区组设计 先确定实验的组数,将动物称重,按体重的轻重顺序编号,再用随机化 工具,如随机数字表等,将动物随机分配至处理组及对照组。 • 随机区组法举例 • 以用四氧嘧啶诱发小鼠糖尿病模型,用药物进行治疗观察疗效为例, 实验中可分为5组:正常对照组、模型组、药物治疗低剂量组、高剂量 组和已知可治疗糖尿病药物组,每组10只,5雌5雄。按下列步骤进行 分组: 1)雌雄分开:分组时雌、雄动物分开分别进行。 2)用记号笔在小鼠尾巴上随机编1-25号。 3)按编号称重,记录每只小鼠的体重。 4)按动物体重顺序依次重新编号。 5)共5个实验组分成5个区组,每个区组都有5只体重相近的动物。第一区 组5只动物为1、2、3、4、5号,第二区组为6、7、8、9、10号,余类 推。 6)抄录随机数表。抄录数字的个数等于区组数减1,如5个区组就抄录4个 数字。第5个动物无随机数字,其分组为调剂。以后的区组按顺序依次 抄录数字。 7)将小鼠分到各组中。
• 对实验动物进行麻醉的目的是,消除实验过程 中引起的痛苦和不适,确保实验动物的安全和 动物实验的顺利进行,是动物实验伦理的一个 重要方面。 • 麻醉方法有全身麻醉和局部麻醉两种。在实验 动物的麻醉中绝大多数采用全身麻醉。 • 应结合实验目的、实验动物种类、日龄及健康 状况等因素进行综合考虑,决定选用的麻醉剂 和麻醉方法。
• 常用脱毛剂配方 配方1:硫化钠8g溶于100mL水中。 配方2:硫化钠:肥皂粉:淀粉的比例为 3:1:7,再加水调成糊状。 配方3:硫化钠10g和生石灰15g溶于 100mL水中。 • 配方1和2适用于家兔和啮齿类动物的脱 毛,配方3适合给犬脱毛。 • 脱毛后用清水将脱毛区清洗干净。
五、实验动物的麻醉方法
• 成为熟练掌握动物实验操作技 术的能手或专家应该是大学/ 研究所每一个动物饲养管理人 员所追求的目标。
动物实验前的准备
1. 所用动物实验设施是否符合本实验要求 普通设施,清洁级、SPF设施,感染性设施, 有毒有害供试品设施,放射性设施 实验室、手术室 2. 所用实验动物的品种、品系、性别、数量等能 否得到 3. 所需要的动物实验技术是否熟练掌握 4. 所用动物实验器具、试剂是否准备好 5. 所用的仪器设备是否处于可运行状态
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三、动物编号常用的标记方法
适用需要个体识别的实验 1. 染料标记法:适合白色被毛的动物,如小鼠、 大鼠、豚鼠、兔等。 黄色:常用3~5%苦味酸溶液 红色:常用0.5%中性红溶液 咖啡色: 2%硝酸银溶液 黑色:煤焦油酒精溶液 优点:简单、易识别 缺点:长期易退色;不能编大号码。
• 全身麻醉简称全麻。全麻是指麻醉药通 过呼吸道吸入、静脉和肌肉注射等途径, 进入实验动物体内,使其产生短时间意 识丧失、痛觉消失、肌肉松弛和反射抑 制等中枢神经系统抑制现象。当麻醉药 从体内排出或在体内代谢破坏后,实验 动物逐渐清醒,不留后遗症。 • 全麻有吸入麻醉法和注射麻醉法两种途 径,吸入麻醉法用挥发性麻醉药,注射 麻醉法用非挥发性麻醉药。
• 饲养繁殖实验动物的目的是用实验动物作 为人类的替难者进行各种生物医学研究。 一方面随着生物医学的发展,实验动物的 使用量逐年增加,使用种类也逐年扩大; 另一方面从动物福利和动物实验伦理学考 虑,又需要尽量减少一些不必要的动物实 验,特别是人类的宠物诸如猫、犬、猴等 ,或者在不得不做的动物实验中尽可能将 动物的痛苦、压迫和不适降到最低。
六、实验动物的给药方法
• • • 1. 2. 3. 4. 5. 6. 经口给药法 注射法 其它途径给药方法 呼吸道给药 皮肤给药 脊髓腔内给药 脑内给药 直肠内给药 关节腔内给药
• 经口给药 1. 拌入饲料、饮水中自由摄取 优点:省人力 缺点:因个体差异,摄入量不等 2. 灌胃 优点:能准确定量 缺点:给动物造成一定的痛苦,需 熟练掌握技术
• 动物实验的伦理判断标准: 1.必须权衡实验的目和得出的结论与动物由 此而受到的伤害和死亡。 2.必須清楚而且明确「沒有任何替代方法可 达到所做的动物实验的目的」这个前提。 3.必须将动物的痛苦、压迫和不适减到最低 程度。
二、 动物实验是实践性非常强的技术 和方法,不能仅靠书本理论知识,需 要通过反复实践加以掌握。 目的: • 保证实验的顺利进行。 • 减少动物承受的痛苦。
兔灌胃法 采用用固定器一人操作,或 一人保定一人操作法。 操作者用左手拇指和中指挤 压家兔两颊,将下颌挤开使兔 被动张口,右手将开口器从一 侧口角插入口腔并固定,用泡 在水中的14号细导尿管,经开 口器的孔插入,向前推进约 15cm,可达胃内,确认泡在水 中的导管另一端没有冒气泡, 说明没有误入气管,即可注入 药液。灌胃量为每只每次80150mL。
(1)吸入麻醉法 • 常用药物为乙醚、氟烷和异氟烷等。吸入麻醉法有开放 吸入和气管内插管吸入两种方法。 • 开放吸入:适用于啮齿类小动物,可用乙醚、氯仿 小动物吸入麻醉机国外已有售。 • 气管内插管:适用于犬、猴、羊等大动物,氟烷和异氟 烷是最常用的麻醉药。 • 吸入麻醉的优点: 麻醉平稳、安全可靠、 停止吸入后很快苏醒 • 缺点: 需要一定的仪器设备, 注意自身防护。
6.大动物手术时应配备麻醉师,在麻醉过 程中密切观察动物的反应,如血压、脉 搏、呼吸和体温,及时调节麻醉药剂量, 保证手术顺利进行。 7.动物在麻醉期间、手术后至苏醒期体温 会下降,应注意手术室的室温。 8. 注意术后护理。
• 麻醉意外的抢救 原因: 麻醉药速度过快、剂量过大、麻醉过深 后果: 中枢神经系统抑制导致呼吸系统、循环系统功能障 碍,引起呼吸、心跳停止。 抢救方法: 要针对具体情况,采取对症治疗的措施。 1.立即停止供给麻醉剂 2.人工呼吸,吸氧 3.苏醒剂 4.呼吸中枢兴奋剂如可拉明等和心脏和呼吸兴奋剂, 如0.1%肾上腺素适量作心内或静脉注射,静脉滴注50% 葡萄糖溶液等。
兔灌胃法
1. 口服给药 用右手将口服药片 夹在拇指和食指之间, 把左手放在犬的圈套上, 用拇指和食指压着犬的 上唇,用力使犬的头向 后仰,继而把右手中指 放在犬的下颌向下压。 当犬的嘴张大时,快速 把药片放在舌根隆起的 部位,合上犬的嘴,维 持头后仰姿势,右手在 咽喉部轻轻按摩。借助 犬本能的吞咽动作服下 药片。
按体重分层随机区组分组
动物编号 随机数字 除数 1 0 5 5 2 2 7 5 3 8 4 5 4 3 7 5 5 6 4 1 5 7 6 8 5 8 3 8 5 9 5 1 5 10 11 5 6 5 12 9 6 5 13 8 1 5 1 3 14 8 0 5 0 5 4 15
余数
组别 动物编号 随机数字 除数 余数 组别
在国际上被普遍认可的动物福利包括以下 5个 内容,即: 1.应提供给动物满足生长发育和繁衍后代的营养食 物和清洁的饮水,使其免受饥渴。(吃好喝好) 2.应提供给动物适当的栖息之地和饲养场所,使其 能休息和睡眠。(休息好) 3.应提供预防动物疾病和患病后及时诊疗的措施, 使其免受疾病和伤害的痛苦。(健康成长) 4.应提供给动物安静的饲养环境,无刺激动物发生 应激和恐惧的场面和声音。(平静生活) 5.应提供给动物同类一起自由玩耍、表达天性的空 间和自由。(表达天性)
动物实验基本知识 和操作技术
上海中医药大学实验动物中心 汤家铭
进行动物实验操作前必须注意的事
一、动物福利和动物实验伦理问题 什么是动物福利? • 动物福利是指动物在整个生命过程中应得到人类的保护, 其基本原则是要善待动物,保证动物的健康和快乐。 • 动物福利的提出是基于这样一个观点,即动物与人一样, 有思维、有情感,应当给予与人一样的生存权。 • 台湾学者夏良宙(1990年)把动物福利概括成两句话: 善待活着的动物, 减少动物死亡的痛苦。 应该再加一句:动物死后应得到妥样本数。 重复的主要作用是估计试验误差、降低试 验误差和增强代表性,提高实验结果的精 确度,保证实验结果能在不同个体中稳定 地重复出来。 • 样本数过少,实验处理效应不能充分显 示;样本数过多,又会增加实际工作中的 困难。因此在进行实验前必须确定最少的 样本例数。最少的样本例数可按一般估测 方法确定,也可通过统计学方法进行测算 确定。
大小鼠麻醉法
(2)注射麻醉法 注射麻醉法是使用非挥发性麻醉药进行全麻 的方法。在动物实验中比较常用。 常用麻醉药: 戊巴比妥钠 硫喷妥钠 氯氨酮 乌拉坦 大动物:静脉注射或肌肉注射 啮齿类动物:腹腔注射
• 实验动物麻醉应注意的事项 1. 大动物麻醉之前应禁食。 2. 麻醉之前应准确称量动物体重,作为计算麻 醉剂用量的依据。 3. 应注意不同麻醉药对动物的作用是不同的, 如戊巴比妥钠、硫贲妥钠等能抑制心肌收缩 力,使肌肉松弛,而氯胺酮则相反。 4. 大动物犬、猴、羊等麻醉前半小时应注射麻 醉前给药如阿托品和苯巴比妥钠。 5. 静脉注射麻醉药是必须缓慢,边注射边观察 动物的意识、角膜反射、肌肉紧张性和对疼 痛的反应,达到麻醉要求时应停止注射。
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