当前位置:文档之家› 第七章 核酸提取与鉴定

第七章 核酸提取与鉴定


RNA酶的蛋白抑制剂(RNAsin)等。
.
23
(1)提取RNA所用器皿的处理及溶液的准备
• 塑料制品:使用灭菌的一次性用品。或用0.1% DEPC水浸泡或用氯仿冲洗(注意:有机玻璃器具 因可被氯仿腐蚀,故不能使用氯仿处理)。
• 玻璃用品:使用前于180℃的高温下干烤6h以上, 或在220℃下干烤3h以上。
➢ 该复合物在高盐溶液中(>0.7mol/L NaCl)是可溶的,通 过有机溶剂抽提,去除蛋白、多糖、酚类等杂质后加入乙 醇沉淀即可使核酸分离出来。
注:CTAB溶液在低于15℃ 时会形成沉淀析出,因此在将其加入
冰冷的植物材料之前必须预热,且离心时温度不要低于15℃。
.
13
基因组DNA-SDS法
SDS法原理
基因组DNA不复性与蛋白质形成絮状沉淀。 • 离心后,质粒DNA留在上清液中。
.
19
煮沸裂解法(偶尔用)
• 通过加热,使细菌裂解、蛋白质和DNA变性。 • 降低温度,质粒DNA复性留于上清液,基因组DNA复性很慢
与蛋白质形成沉淀,可通过离心除去。
梯度离心法(极少用)
• 基因组DNA断裂,吸附大量EB,密度大;质粒DNA密度小。 • 利用氯化铯梯度离心,分离基因组DNA和质粒DNA。
.
20
4、质粒DNA的纯化
• 离心分离后,吸取含有质粒DNA的上清液。 • 用苯酚、氯仿抽提,除去溶解于上清液中的蛋白质。 • 用乙醇或异戊醇沉淀质粒DNA(与基因组DNA方法同)。
核酸溶液 蛋白质
.
苯酚氯仿
21
四、RNA的提取
(一)总RNA的提取
所有RNA的提取过程中都有五个关键点,即:
①样品细胞或组织的有效破碎;
.
30
5、试剂盒快速提取法
• 裂解液含胍盐,抑制RNA酶,使蛋白质和DNA同时 变性;
• 氯仿等抽提去除蛋白质和DNA; • 乙醇或异丙醇沉淀纯化RNA; • 此法操作简便快速。
.
31
Trizol一步提取总RNA:
TRIzol的主要成分是异硫氰酸胍和苯酚。 异硫氰酸胍属于解偶剂,是一类强力的蛋白质变性剂, 可溶解蛋白质主要作用是裂解细胞,使细胞中的蛋白, 核酸物质解聚得到释放。 苯酚虽可有效的变性蛋白质,但是它不能完全抑制 RNA酶活性,因此TRIzol中还加入了8-羟基喹啉、β巯基乙醇等来抑制内源和外源RNase。
rRNA、5s rRNA的三条带,其中28s rRNA的亮度
应为18s rRNA的两倍,5. s rRNA 较弱。
39
六、电泳
根据电泳支持介质分为
琼脂糖凝胶电泳: 多用于鉴定较大核酸片段(0.1~60 kb) 聚丙烯酰胺凝胶电泳: 用于鉴定较小的核酸片段(50~1000 bp)
.
40
琼脂糖凝胶电泳
.
6
3、微生物培养物样品
离心获取菌体细胞, 加缓冲液洗涤, 加缓冲液悬浮菌体细胞。
4、微生物混合样品
用缓冲液悬浮菌体,低速离心,沉淀杂质。 高速离心获取菌体细胞。 用缓冲液洗涤菌体细胞。 加缓冲液悬浮菌体细胞。
.
7
(二)提取用具预处理
1、DNA提取用具的处理
要求无菌;试剂、器材高压干燥等进行无 DNA酶处理。
苯酚氯仿
.
11
3.沉淀DNA
有机溶剂沉淀DNA:2倍体积无水乙醇(或1倍体积的异戊醇)
再用75%乙醇清洗多次。
4.重新溶解DNA
将DNA溶于水或TE溶液。
.
12
基因组DNA-CTAB法
CTAB法原理(植物DNA提取经典方法)
➢ CTAB(hexadecyltrimethylammonium bromide,十六烷 基三甲基溴化铵),是一种阳离子去污剂,可溶解细胞膜, 并与核酸形成复合物。
6)取上清0. 5ml(注意:取最上层水相,小心污染,宁可吸少点也 不要吸到中间层的物质)放入另一个1.5ml的EP管中;
7)加入等体积的异丙醇(0.5ml),涡旋混匀;
.
33
8)室温,静置10分钟(该条件由Trizol试剂盒提供;其他提供的
条件用-20℃、1小时,目的为了更好分层)
9)离心机4℃、14000转/分,离心10分钟
.
17
2、收获细菌和溶菌
• 离心收集细菌细胞。
• 细菌裂解方法: 机械法 化学试剂法 (SDS) 溶菌酶-化学试剂联合法(最常用)
.
18
3、分离质粒DNA 基因组DNA与质粒DNA分离
碱裂解法(最常用)
• 用溶液1(EDTA)悬浮菌体。 • 溶液2(NaOH和SDS)裂解菌体,蛋白质与DNA发生变性。 • 溶液3中和pH,质粒DNA分子能够迅速复性,呈溶解状态,
➢ SDS是一种阴离子去垢剂,在高温(55~65℃)条件下 能裂解细胞,使染色体离析,蛋白变性,释放出核酸;
➢ 提高盐(KAc或NH4Ac)浓度并降低温度(冰浴),使蛋 白质及多糖杂质沉淀,离心后除去沉淀;
➢ 上清液中的DNA用酚/氯仿抽提,反复抽提后用乙醇沉 淀水相中的DNA。
.
14
DNA提取的一般流程
.
29
4、一步快速热酚抽提法
• 将异硫氰酸胍、巯基乙醇和去污剂SDS等联合使 用,抑制RNA的降解,裂离;
• 用高温苯酚、氯仿等抽提去除蛋白质和DNA,乙 醇或异丙醇沉淀纯化RNA。
• 此法操作简便快速,可在3小时以内处理大批样品, 对大量或少量组织的细胞RNA提取均甚合适。
真空干燥5分钟)
14)加入50μl DEPC处理水溶解(可以根据管底的白色沉淀判断
RNA量的多少加DEPC处理水)
15)-80℃冰箱保存。
.
34
组织匀浆
.
35
(二)mRNA的提取
从总RNA中分离mRNA, 用Oligo(dT)层析柱。 mRNA含polyA,在高盐浓度条
件下与Oligo(dT)结合,其 他成分被洗掉,再用低盐浓 度洗脱mRNA。
• 有机玻璃的电泳槽等,可先用去污剂洗涤,双蒸水 冲洗,乙醇干燥,再用3%H2O2室温浸泡10min,然 后用0.1%DEPC水冲洗,晾干。
.
24
• 所需溶液的配制:必须用高压灭菌的水和RNA 提取专用的化学试剂配制溶液,用干烤过的药 匙称取试剂,把溶液装入无RNase的玻璃器皿。
• 严格来说,所有溶液均应用0.1%DEPC于37℃ 处理12小时以上,然后于100℃加热15分钟或高 压灭菌15分钟,去除残余DEPC。
2、RNA提取用具的处理
要求无菌,防止二次污染。 RNA易被RNase水解,RNase无处不在且 耐高温,提取条件要求严格。
.
8
二、真核生物基因组DNA的常规提取
裂解细胞,溶出DNA
除去杂质
沉淀、浓缩DNA
重新溶解DNA
.
9
⒈ 破碎细胞,溶解DNA:
用提取液(裂解液)破坏细胞壁、细胞膜和核膜。
微生物样品提取液:含表面活性剂SDS、溶菌酶等 动物样品提取液:含SDS、蛋白酶K等 植物样品提取液:含CTAB
.
36
五、核酸的鉴定
(一)核酸浓度检测
OD260=1时(比色皿厚度1.0cm) 双链DNA浓度为50 μg/ml, 单链DNA或RNA浓度为40 μg/ml。
DNA(μg/ml) = OD260×50 RNA(μg/ml ) = OD260×40
.
37
(二)核酸纯度检测(紫外吸收法)
• 核酸在260 nm处有吸收峰,蛋白质在280 nm有吸 收峰
10)弃上液(移液器调至1ml,分两步快速轻轻吸弃上清:第1步,沿
液面吸弃约0.9ml上清;第2步,沿液面吸弃其余上清;注意吸头不要接触 到沉淀斑区)
11)沿试管内壁轻轻加入1ml 4℃预冷的75%乙醇,注意切勿 冲击到沉淀斑区
12)离心机4℃、10000转/分,离心5分钟
13)弃上液(用枪把里面的乙醇吸去,留极少许即可,以防干燥过 程中把RNA烤干),60℃恒温箱干燥5分钟(注意:打开管盖;或用
核酸酶可被Ca2+、Mg2+等激活,提取液均含有螯合剂(如EDTA, 柠檬酸等),螯合这些离子。
.
10
2、除去杂质(主要是蛋白质)
(SDS,破膜、蛋白质变性沉淀)——苯酚抽 提蛋白质——氯仿抽提、萃取苯酚
经离心后溶液分为三层:上层是核酸溶液、 中间不溶物为变性蛋白质,下层是苯酚氯 仿溶液。
核酸溶液 蛋白质
第七章 核酸提取与鉴定
.
1
核酸的提1取与鉴定
概述
第一节 预处理
第二节 DNA的提取
第三节 RNA的提取
第四节 核酸的鉴定
.
2
一、概 述
研究对象:基因组DNA、质粒DNA、总RNA、mRNA
过程:
裂解:破碎细胞,使细胞中的核酸游离 在裂解体系中
纯化:使核酸与其它杂质彻底分离, 如蛋白质、盐等
总原则:①应保证核酸一级结构的完整性;
• 这种方法能得到高质量的RNA,同时分离出细胞 染色体DNA。
.
28
2、盐酸胍-有机溶剂法
• 利用盐酸胍使蛋白质变性,抑制RNA酶;
3、氯化锂-尿素法
• 利用高浓度尿素变性蛋白质同时抑制RNA酶; • 氯化锂选择性沉淀RNA。 • 其缺点是有时会存在DNA污染,氯化锂沉淀RNA
会丢失一些小分子RNA。
< 1.8,含蛋白杂质;>. 2.0,RNA出现降解
38
(三)核酸完整性检测
• 电泳:带电颗粒在电场的作用下发生迁移。
• 核酸样本的完整性和分子量可通过琼脂糖凝胶电 泳测定(RNA常采用甲醛琼脂糖变性凝胶电泳), 溴化乙锭染色,紫外灯观察。
• 凝胶上RNA存在处可观察到清晰的条带。完整性
相关主题