第 1 页 I型胶原-壳聚糖复合材料的生物相容性研究1 张永强1 任志鹏1 杨自权1 孙晓丹2 卫小春1 1山西医科大学第二医院骨科骨与软组织损伤修复山西省重点实验室 030001

2清华大学材料工程学院

【摘要】 目的 评价I型胶原-壳聚糖复合材料作为组织工程支

架材料的生物相容性。方法 体外培养兔骨髓间充质干细胞（BMSCs），采用四甲基偶氮唑盐（MTT）比色法检测不同分组的BMSCs生长情况，酶标仪测吸光度值（OD），计算细胞相对增值率（RGR％）；利用材料浸提液与兔新鲜血混合观察红细胞溶解情况，评价材料细胞生物相容性。结果 空白组（A组），50％浓度组（B组）和100％浓度组（C组）BMSCs均生长良好，并于1、3、5天逐渐增殖，阳性对照组（D组）细胞于第１天开始变圆、皱缩，3天和5天均皱缩死亡。A、B、C三组细胞在第1、3、5天各组吸光度值无显著差异（P>0.05），但均与Ｄ组有明显统计学差异（P<0.05）。材料相对溶血率为4.1％。结论 I型胶原-壳聚糖复合材料无明显细胞毒性，有良好的生物相容性。 【关键词】 胶原-壳聚糖材料；细胞毒性试验；溶血试验 Biocompatibility researches of type I collagen - chitosan scaffold Zhang yongqiang1, Ren zhipeng1, Yang ziquan1 et al.1 Department of Orthopedics,the second hospital of Shanxi Medical University, bone and soft tissue healing Key Laboratory of Shanxi Province;

1 基金项目：国家自然基金项目(30973048)；科技部国际合作重点项目（2008GR0403）；国家人力资源

与社会保障部2009年度留学回国人员科技活动择优资助项目 作者简介：张永强（1985-），男，在读硕士研究生，研究方向为关节软骨的损伤与修复  通讯作者：杨自权（1972-），男，副主任医师，硕士研究生导师，e-mail: yzqonline@126.com 卫小春（1951-），男，主任医师，博士研究生导师，硕士研究生导师,e-mail:weixiaochun06@yahoo.com.cn 第 2 页

2 Tsinghua University, Institute of Materials Engineering [Abstract] Objective To evaluate the biocompatibility of the type I collagen - chitosan scaffold for tissue engineering. Methods Cultured bone marrow mesenchymal stem cells (BMSCs)in 4 different groups(A,B,C and D).Used tetrazolium salt (MTT) colorimetric to assay the growth of different groups,and measure the optical density (OD)by microplate reader, then calculate the relative growth rate (RGR%).Mixed the scafford extracts with fresh blood of the rabbit,the grade of hemolysis was made in the measures of optical density at 492nm. Results BMSCs of group A, group B and group C were growing well, and proliferating gradually in the 1st,3rd and 5th day. The positive control group (D) cells rounded and wrinkled in the 1st day, then, cells were shrinkage death. The optical density were no significant statistical differences between group A,B and C (P> 0.05), but all had significant statistical differences with group D (P <0.05).Hemolysis percentage of the scafford was 4.1%. Conclusion I collagen - chitosan scafford has no significant cytotoxicity, and accords with the biomaterial standards of tissue engineering. [Key words] I collagen-chitosan scafford; Test of hemolysis；Test for cytotoxicity

壳聚糖是一种天然高分子生物材料，为线性多糖，是氨基多

糖(GAG)的异构物。在自然界中广泛存在,是一种来源广泛、容易获得并具有良好生物相容性的可降解生物材料。I型胶原是很多组织的细胞外基质成分，并已应用于很多组织工程的支架材料中，但由于单独应用具有降解速率快、物理性能差等不足 ，因此常常与其他材料复合，以避免一些不足。本实验研究的I型胶原-壳聚糖复合材料是一种将I型胶原和壳聚糖有机结合的新型组织工程复合载体支架材料。 细胞毒性实验是一类在离体状态下模拟生物体生长环境，检测材料和器械接触机体组织后生物学反应的体外试验，它是对材料进行生物学评价的重要检测指标之一。本实验通过四甲基偶氮唑盐（MTT）比色法检测材料浸提液对骨髓间充质干细胞（BMSCs）第 3 页

生长的影响，同时进行材料浸提液的溶血试验检测，评价新型载体材料——I型胶原-壳聚糖复合材料作为组织工程支架材料的生物相容性。 材料与方法 1 主要试验材料、试剂和仪器 I型胶原-壳聚糖复合材料（清华大学提供）；2月龄新西兰大白兔（山西畜牧研究所）；胰酶（Sigma公司）；DMEM-F12（赛默飞世尔生物化学有限公司）；胎牛血清（杭州四季青）；四甲基偶氮唑盐（Sigma公司）；苯酚（天津市福晨化学试剂厂）；BB5060型CO2培养箱（Heraeus公司）；MK3型酶标仪（热电上海仪器有限公司）。 2 细胞毒性试验 2.1 BMSCs的培养 取2月龄新西兰大白兔，称重为3kg。耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠（1ml/kg体重）约3ml麻妥，无菌条件下于双侧股骨大转子处穿刺，分别自两侧骨髓腔中抽取骨髓至含有2ml肝素（3000U/ml）注射器内，置于离心管中冲洗离心后，各加含10%胎牛血清DMEM-F12培养基5ml，分装于2个25cm2培养瓶内，置入37℃，5%CO2饱和湿度的培养箱中培养。3d后首次换液，以后每2-3d换液一次。待细胞长满瓶底达80-90%（图１），进行传代，传至三代（图2）备用。 2.2 浸提液的制备[1]（ISO10993-5） 根据《GB/ T 16886. 522019/ISO 10993-5 :2019 医疗器械生物第 4 页

学评价第5 部分:体外细胞毒性试验》中的浸提液试验，将材料按1cm²试样表面积加10ml浸提介质比例在37℃恒温箱中浸提24h。浸提介质为含10%小牛血清的DMEM-F12培养液。 2.3 实验分组及检测 空白组(A组)：含10%小牛血清的DMEM-F12培养液 50%浓度组（B组）：材料浸提液浓度为50% 100%浓度组（C组）：材料浸提液浓度为100% 阳性对照组（D组）：0.64%苯酚 取第三代BMSCs，配制成1×105/ml细胞悬液， 取3块96孔培养板，每板4组，每组10孔，每孔加100ul细胞悬液，置于条件同前的培养箱中培养。24小时后，弃去原培养液，用PBS液洗涤2次后，分别按实验分组进行换液，再把培养板放入原培养箱内继续培养，分别于1、3、5天各取出一块培养板，在倒置相差显微镜下观察活细胞形态、摄影，然后加入20ul孔MTT液，继续培养6小时，吸除原液，再加入150ul孔二甲基亚砜（DMSO），震荡10分钟，在酶联免疫检测仪上以450nm波长测吸收值。 按下式计算细胞相对增殖率(RGR)： RGR=（实验组吸光值/空白对照组吸光值）×100% 对所得RGR按美国药典细胞毒性分级标准对其进行毒性分级。 美国药典[2]（USP XXII 24版）中细胞相对增殖率与细胞毒性的分级的关系(下表) The relationship between cell proliferation rate 第 5 页

and cytotoxicity grade of USP 细胞相对增殖率(％) 细胞毒性分级 ≥ 100 0 ≥80 1 ≥50 2 ≥30 3 ≥0 4 3 溶血试验 3.1 采集新西兰大白兔血 4mL与 2 mL肝素（3000U/ml）混合备用。 3.2 实验分组及检测 试验分组：生理盐水组(阴性对照)、 实验组（材料100%浸提液）和蒸馏水组(阳性对照组)。 每组10个样本，每个样本5 mL。取抗凝新鲜血液0.1 mL分别加入3组样品中，37℃培养箱孵育60min。观察大体样本溶血情况。低速离心机3000r／min 10min，酶标仪492nm下对样品进行OD值检测。 溶血率=(Dt-Dnc)／( Dpc-Dnc)×100％ 按上述公式计算溶血率 (Dt：待测OD值；Dpc：阳性对照OD值；Dnc：阴性对照OD值)。 4 统计分析 对MTT法及溶血试验测得各组吸光度值采用均数标准差表