实验报告果胶酶在果汁生产中的作用一．实验目的1.探究不同温度对果胶酶活性的影响;2.探究不同 ph 对果胶酶活性的影响;3.探究果胶酶的用量对果汁生产的影响。
二．实验原理1.果胶酶的活性受温度影响。
处于最适温度时，活性最高。
果肉的出汁率、果汁的澄清度与果胶酶的活性大小成正比。
2.果胶酶的活性受ph影响，处于最适ph，酶的活性最高，高于或低于此值活性均下降。
果肉的出汁率、果汁的澄清度与果胶酶的活性大小成正比。
3.在一定的条件下，随着酶浓度的增加，果汁的体积增加；当酶浓度达到某一数值后，在增加酶的用量，果汁的体积不再改变，此值即是酶的最适用量。
三．实验材料与用具苹果、果胶酶、盐酸溶液、榨汁机、电子天平、恒温水浴锅、烧杯、量筒、试管、漏斗、温度计、玻璃棒、滤纸、滴管、三脚架四．实验步骤（一）温度对果胶酶活性的影响1.制备果汁选取一个中等大小的苹果( 约 200g) 洗净后，不去皮，切成小块，放入榨汁机中，加入约 200ml 水，榨取 2min，制得苹果泥。
量取一定体积的苹果泥，不同条件下处理后，用滤纸进行过滤即可得到果汁；2.取9支试管编号并分别加入等量的果汁和果胶酶；3.将9支试管分别放入30℃、35℃、40℃、45℃、50℃、55℃、60℃、65℃、70℃的水浴锅中保温10分钟；4.过滤果汁用量筒测量果汁的里量，并记录数据。
（二）ph 对果胶酶活性的影响1.制备果汁；2.取5支试管编号并分别加入等量的果汁和果胶酶；3.将5支试管放入40℃恒温水浴锅中加热；4.待试管内温度稳定后在5支试管分别加入ph分别为5、6、7、8、9的盐酸溶液；5.恒温保持10min；6.过滤果汁用量筒测量果汁的里量，并记录数据。
（三）果胶酶的用量对果汁生产的影响1.配制不同浓度的果胶酶溶液准确称取纯的果胶酶1mg、2mg、3mg、4mg、5mg、6mg、7mg、8mg、9mg，配制成相等体积的水溶液，取等量放入9支试管中，并编号1～9。
；2.在9支试管中加入等量的苹果汁；3.将上述试管放入恒温水浴加热一段时间。
4.将不同浓度的果胶酶分别迅速与各试管的苹果泥混合，然后再放入恒温水箱中。
5.恒温水浴约20分钟6.过滤后测量果汁的体积四．实验结果五．分析与结论篇二：果胶酶活性测定实验报告一、实验设计二、实验报告篇三：果胶的实验报告柑橘果皮中天然产物的提取和评价实验报告一、实验目的：1、了解柑橘果皮中的天然产物组份都有哪些2、了解果胶的性质和提取原理3、掌握果胶的提取工艺4、学习果胶的检验方法和果酱的制备方法二、实验原理：果皮中含大量的功能性物质，如香精油、果胶、类胡萝卜素、橙皮苷、柠檬苦诉等等。
果胶是一组聚半乳糖醛酸，是由半乳糖醛酸组成的多糖混合物，它含有许多甲基化的果胶酸。
天然果胶是以原果胶，果胶，果胶酸的形态广泛分布于植物的果实、根、茎、叶中的多糖类高分子化合物，是细胞壁的一种组成成分，伴随纤维素而存在。
它具有水溶性，工业上即可分离，其分子量约5万一30万。
在适宜条件下其溶液能形成凝胶和部分发生甲氧基化（甲酯化，也就是形成甲醇酯），其主要成分是部分甲酯化的a(l,4)一d一聚半乳糖醛酸。
在可食的植物中，有许多蔬菜、水果含有果胶。
柑橘、柠檬、柚子等果皮中约含30％果胶，是果胶的最丰富来源。
柑桔为芸香科柑桔属，其产量居于水果之首。
而柑桔皮约占柑桔果重的20％，其中果胶含量约为30％。
目前，柑桔皮除少量药用外，大从柑桔皮中提取的果胶不仅是对柑桔皮的“废物利用”，可解决废物处理问题，还可提高柑桔生产加工的经济效益，是柑桔综合利用的很好途径。
果胶的提取主要采用传统的无机酸提取法（酸法萃取）。
该法的原理是是利用果胶在稀酸溶液中能水解，将果皮中的原果胶质水解为溶性果胶，从而使果胶转到水相中，生成可溶于水的果胶。
然后在分离出果胶。
提取液经过滤或离心分离后,得到的是粗果胶液,还需进一步纯化沉淀,本实验采用醇沉淀法。
其基本原理是利用果胶不溶于醇类有机溶剂的特点，将大量的醇加入到果胶的水溶液中，形成醇—水混合溶剂将果胶沉淀出来，一般将果胶提取液进行浓缩，再添加60 %的异丙醇或乙醇，使果胶沉淀,然后离心得到果胶沉淀物，用更高些浓度的异丙醇或乙醇洗涤沉淀数次，再进行干燥、粉碎即可。
三、主要仪器试剂：烧杯（100、250ml），电炉，纱布，电子天平，锥形瓶，胶头滴管，石棉网，ph试纸，玻璃棒，温度计，恒温水浴锅，蒸发皿，表面皿，洗瓶柑橘皮，%～%hcl溶液，1%氨水，95%乙醇四、实验步骤：1、原材料预处理称取新鲜柑橘皮用水漂洗干净①后，于250ml烧杯中加水约120ml，加热到90℃②，保持10分钟。
取出用水冲洗后切成尺寸约1cm大小的颗粒，在250ml烧杯中用50～60℃的热水漂洗，直至漂洗水为白色，果皮无异味为止③。
2、酸法萃取将洗净的果皮放入锥形瓶中，加水50～60ml，加%～%的hcl调节ph值在～之间（用玻璃棒沾取少量溶液滴于ph试纸上，与比色卡对比）。
用保鲜膜封口④后放入恒温水浴箱（温度设置为90℃左右），提取1h。
隔一段时间测量ph值，并及时补充水分和盐酸。
趁热用四层纱布过滤。
3、酒精沉淀溶液冷却后，用1%稀氨水调ph3～4，在不断搅拌下加入95%乙醇，按果胶︰乙醇=1︰（体积比）的量加入，使混合液中酒精浓度达50%～60%，然后静置15min,让果胶沉淀完全。
用四层纱布滤取果胶，酒精废液回收。
4、干燥将果胶置于表面皿上，用恒温水浴箱干燥，称重，计算产量。
5、色素提取称取柑橘皮，清洗剪碎后放入锥形瓶中，加20ml乙醇，用保鲜膜封口，50～60℃恒温水域2h。
将溶液抽滤，滤液置于蒸发皿中，于恒温水浴箱内蒸至含少量水分备用。
6、制作果胶软糖五、数据处理：称重后得到果胶由于得到的果胶中含有一定量的水分，实际产量应为：×5%= 按照配方1计算得到制作果胶软糖所需原料的质量如下表：果胶产率：×100%=%六、实验小结：① 、用清水处理柑橘皮主要是为了除去泥土杂质和施用的农药化肥等。
② 、加热柑橘皮的目的是灭酶，以防果胶发生酶解。
③ 、漂洗的目的主要是除去色素等，以免影响果胶的色泽和质量。
为了提高漂洗的效率和效果，将果皮颗粒转裹在四层纱布里漂洗，每次漂洗都要挤压干再在进行下一次漂洗。
④ 、保鲜膜封口是为了防止加热造成水分和盐酸的挥发，进而引起ph值的变化。
七、思考与讨论：产率低的原因可能是：1、在酸法萃取的步骤中，加水偏少，未能使全部果胶溶解出来。
2、ph调节耗时较长，有可能在ph偏大的情况下就开始提取。
3、实验所用柑橘成熟后保存时间过长，部分果胶已经分解。
4、在将果胶蒸干的过程中，部分果胶粘在表面皿壁上。
篇四：果胶开放实验总结报告2开放实验总结报告学生姓名班级学号所在院系专业开放实验室名称有机化学实验室日期 2013年4月21日北京理工大学实验室设备处制一、实验项目概况篇五：果胶提取实验报告1桔皮中果胶提取技术的试验分析【摘要】酸浸提法提取果胶具有快速、简便、易于控制、提取率较高等特点，用盐酸浸提、乙醇沉淀法进行了从桔皮中提取果胶的工艺试验。
用单因素试验进行工艺参数的优化，其适合的工艺条件是：液料质量比为20；浸提液ph值为2；浸提温度为90℃。
关键词：桔皮果胶提取工艺工艺参引言：果胶是一种亲水性植物胶，属于多糖类物质，广泛存在于高等植物的根、茎、叶、果的细胞壁中。
通常人们所说的果胶系指原果胶、果胶和果胶酸的总称，是一种高分子聚合物，分子量介于20 000-400 000之间。
其基本结构是d一吡喃半乳糖醛酸，以1，4甙链连接成的长链，其中部分半乳糖醛酸被甲醇酯化 [1]。
胶凝剂、增稠剂、稳定剂和乳化剂，随着功能性多糖的开发研究，果胶作为水溶性膳食纤维，越来越受到重视。
应用必定会越来越广泛[2-4]。
我国是柑桔的主要产地，柑桔皮中果胶含量可达10%～30%。
从桔皮中提取果胶不仅有极大的工业价值，而且对综合开发、利用柑桔资源，提高原材料利用率，减少环境污染，有重要的实际意义[2,4,6]。
果胶的提取一般有酸提取法、离子交换法、微生物法和微波加热处理法等方法[5-9],由于酸提取法具有快速、简便且提取率高的优点，国内外大多采用此法。
果胶分离沉淀主要有乙醇沉淀法和盐析法。
国内主要采用乙醇沉淀法，而国外多用盐析法或不经沉淀直接喷雾干燥。
针对我国情况而言，对乙醇沉淀法已有大量研究，而本实验也是在总结别人成果的基础上进行对比以及提取工艺条件的优化。
1.材料与方法1．1 材料桔皮采用成熟新鲜、无病虫果害的晚熟蜜桔，人工取皮，在40℃下干燥，粉碎至1～3 mm，待用。
盐酸、乙醇、氢氧化钠、无水氯化钙、冰醋酸和甲基红，均为化学纯。
1．2 果胶提取方法果胶提取工艺为：原料→洗涤→失活→干燥→粉碎→酸提取→过滤→浓缩→冷却→乙醇沉淀→离心分离→干燥→称量→粉碎→果胶。
剔除腐烂变质、发黑的桔皮，用清水洗净后，放入烧杯中，加水，加热至90 ℃保温5～10 min，使酶失活,捞出桔皮，将桔皮在40 ℃下干燥，切碎。
将20 g原料加入用hc1预先配制的、具有一定ph值和温度的酸溶液中，维持所需的温度达到一定的提取时间，并不断搅拌。
趁热用布氏漏斗过滤得果胶提取液。
将滤液用旋转蒸发仪在60-70 ℃下浓缩至原体积的1／3时为止。
果胶浸提液冷却至常温后加入1倍体积的95 乙醇，搅拌、静置2 h，使果胶沉淀析出。
用布氏漏斗过滤得粗果胶。
在60-70 ℃干燥，粉碎即得果胶粉。
随后进行提取物中果胶含量的测定和提取率的计算。
1．3 试验方法单因素试验,分别研究不同液料质量比对果胶提取率的影响(浸提液ph值3、温度80℃、浸提时间45 min)；不同浸提液ph值对果胶提取率的影响(浸提液温度80℃、液料质量比10、浸提时间45 min)；不同浸提液温度对果胶提取率的影响(液料质量比10、浸提液ph值3、浸提时间45 min)。
1．4果胶提取率果胶提取率表示为dp=b/e*100%式中b一提取的果胶量，e——原料量（g）。
1．5 仪器设备恒温水浴锅、旋转蒸发仪、电热干燥箱、可用精密ph试纸、电子天平、布氏漏斗、抽滤瓶、玻棒、尼龙布、表面皿、烧杯、小刀、真空泵。
2.结果与分析2．1 液料质量比对果胶提取率的影响液料质量比对提取率影响如图1所示。
液料质量比太小，则难以保证原料中的果胶质全部转移到液相中，物料粘度大、过滤困难、残留增多造成提取不完全、提取率低；液料质量比太大，提取出来的果胶质在溶液中的含量太低，过滤容易，但是浓缩所需的时间长、沉淀剂乙醇的消耗量大，沉淀效果不理想。
因此，提取果胶所用酸液量的多少，直接影响到已水解的可溶性果胶能否全部转移至液相，同时也影响提取液过滤速度，以及蒸发浓缩时的能耗。
图1 液料比与果胶提取率的关系曲线fig．1 relationship between solution／material ratioandextract rate of pection从图1中可以看出，当提取的液料质量比大于20时，果胶提取率随液料质量比的增大而减小；当提取的液料质量比小于20时，果胶提取率随液料质量比的减少而减小；当提取的液料质量在20时，提取效果较好。