ELISA检测 ----- 固相捕获法测IgM抗体在病原体急性感染的诊断中，通常需检测IgM抗体，如急性甲型肝炎诊断的血清抗HAVIgM检测、急性乙型肝炎病毒感染的血清抗HBc lgM检测和TORCH项目的系列IgM检测等。

IgM抗体也有使用间接法测定的，如目前在市场上可见到的有些TORCH系列的IgM检测试剂盒。

在使用间接法测IgM抗体时，由于临床血清样本中含有高浓度的IgG抗体，其中部分特异IgG抗体将与IgM抗体竞争与固相抗原结合，从而干扰IgM抗体的检测。

因此，在使用间接法测定IgM抗体时，通常须将血清样本用抗人IgG抗体或SPA预处理，以去除IgG的干扰。

这样不但测定较为繁琐，而且影响测定的特异性和灵敏度。

目前，常用的IgM抗体检测方法为捕获法，即以抗人IgM抗体(抗人u链)作为固相抗体，当加入血清标本时，其中的IgM类抗体(特异的和非特异的)即可被固相抗体捕获，再加入特异抗原，其与固相上捕获的IgM抗体结合后，加入酶标抗特异抗原的抗体，最后加入底物显色。

具体操作步骤如下：1．首先将抗人IgMbt链抗体于碳酸盐缓冲液中40c下过夜包被聚苯乙烯等固相，形成固相抗体，洗涤去除未与固相结合或结合不紧的抗体后，用小牛血清或牛血清白蛋白等封闭，洗涤去除未结合的部分及杂质。

2．加入含待测IgM抗体的临床样本如血清等，温育一定时间后洗板；此时，待测样本中的IgM抗体就会与固相上的抗P链抗体反应而吸附于固相上。

3．加入特异的抗原如HAV抗原、HBcAg等，温育一定时间后洗板；此时，特异抗原就会与固相上的特异IgM抗体发生反应。

4．加入酶标记的抗特异抗原的抗体，温育一定时间后洗板；此时，在固相上即形成相应的抗原抗体复合物。

5．加入酶底物，温育显色测定本方法要着重注意的是RF(1gM类)及其他非特异IgM的干扰。

RF(1gM类)由于其能与固相抗人u 链抗体结合，并可与随后加入的酶标抗体(动物IgG)反应，从而导致假阳性反应。

而非特异IgM由于其在第一步温育中，可与特异IgM竞争与固相抗体结合，所以会影响测定的灵敏度。

因此，使用本法测IgM，必须对临床样本进行适当稀释。

样本稀释后，上述产生干扰作用的非特异IgM含量减少，而特异IgM由于处于相应病原体的急性感染期，滴度很高，一定稀释后，不会有明显影响，况且，在某些病原体如HBV的慢性感染阶段，IgM类特异抗体也能持续存在，只不过滴度要低很多。

因此，如不对血清样本稀释，就直接检测，即使是没有非特异IgM的干扰，阳性测定结果也没有急性感染的诊断价值。

现在，有些试剂生产厂家，为了迎合临床实验室减轻劳动强度、简便操作的要求，生产了不需对样本进行稀释的抗HAVIgM和抗HBclgMELISA试剂盒，现有不少实验室也在使用。

鉴于上面提到的原因，我们建议临床实验室在做抗HAVIgM和抗HBc lgM等类检测时，应使用对样本进行稀释的试剂盒，以保证检测的临床价值。

酶联免疫吸附测定ELISA结果判定的常用缩写ELISA测定按其表示测定结果的方式分为定性和定量测定两大类。

定性测定只是对标本中是否含有待测抗原或抗体作出“有”或“无”的结论，分别用“阳性”和“阴性”来表示。

可见定性测定通常是用于传染性病原体的抗原或抗体的测定，以判断特定病原体感染的存在与否。

而定量测定则是对标本中待测抗原的多少进行量值测定，以具体数值表示。

定量测定基本上是用于非病原体抗原物质的测定，如激素、细胞因子、肿瘤标志物、小分子药物等。

目前国内应用的ELISA试剂盒绝大部分是用于传染性病原体的抗原或抗体的定性测定，也有少部分用于。

FP，hCG、细胞因子等的定量测定。

ELISA定性测定的“阴性”和“阳性”的判定依据是试剂盒所确定的阳性判定值(cut-off)。

定量测定的“量值”依据是试剂盒中所带标准品同时测定得出的剂量反应曲线(又称标准曲线)。

实验室进行室内质控时使用。

下面再解释一下在ELISA定性测定结果判定中常用的一些缩写：(1)S／CO：其中S为sample(样本)或specimen(标本)的简写，表示的是标本测定的吸光度值，CO 为cut-off值的简写。

除竞争抑制法外，其他ELISA定性测定模式中，当S／CO值大于或等于1时，标本的测定为阳性，小于1时为阴性。

(2)S／N或P／N：其中S同(1)，N为negative(阴性对照)的简写，P为patient(患者)的简写。

较早的试剂盒很多都使用S／N或P／N≥2．1为阳性判定标准，现仍有一些试剂盒使用这种方式。

这种方式与S／CO方式无根本性区别，只不过是前者将阴性对照(N)的2．1倍视为cut-off值而已.酶免疫试验的优点及局限性酶免疫试验之所以能成为临床免疫检验中的主导技术，是与它的方法上的特异性和灵敏性、操作上的简便性以及试剂的稳定性分不开的，还有很重要的一点是，其对环境没有污染威胁。

尽管如此，作为一项免疫检验技术，酶免疫试验还是有其局限性的，不但所检测的生物学体液样本如血清中有可能存在各种干扰实验的因素，而且在实验过程中，影响结果的因素也很多，尤其是进行手工的ELISA测定时。

此外，在定性ELISA测定中，阳性判定值(CUT-OFF)的建立，是在一定的统计学基础上的，相对于某个具体的受检者来说，其有可能并不具备正确性。

例如，使用ELISA方法检测抗HCV及抗HIV或HBsAg，有时候，检测所得的阳性结也许并不是真正的阳性，而需要使用其他方法如重组免疫印迹(recombinant immunoblot as—say，RIBA)、蛋白印迹(Westernbl。

t，WB)或中和试验来确认，才能报告阳性。

这里抗HCV和抗HIV的检测均使用病毒部分的基因工程抗原，其他一些病毒如流感病毒、腮腺炎病毒和水痘病毒等感染人体后，亦或一些自身抗体，也有可能会导致假阳性反应。

HBsAg的测定主要是弱阳性的问题，这与ELISA测定的“灰区”有关系，处于cut-off值周围亦即“灰区”的结果的可靠性通常较差，阳性当然需要确认，阴性却也未必是真，这一点在血站筛检献血员血液时是非常重要的，必须引起注意，并采取适当的措施，防止此类严重影响人们健康的传染性疾病经输血传播，本书后面的有关章还会对此问题做详细论述。

此外，免疫测定的基础是抗原抗体的特异反应，因此，如检测抗原，除了要求抗体(单抗或多抗)是特异的外，还要求待测抗原上必须存在有能与所用抗体结合的抗原决定簇，如果因为基因突变导致某些位点的不表达，或者结合位点因为某些原因被封闭或阻断，都会影响抗体与抗原的结合，造成假阴性结果。

如检测抗体，则要求所用包被抗原应尽可能包含所有的特异抗原决定簇，同时又尽可能不含有非特异的成分，这一点往往由于技术水平的限制而难以完全做到，因此，从某种意义上来说，假阳性假阴性是不能完全避免的，尽管通过努力，可以将其降至很低的程度。

这也是建立临床免疫检验方法所努力的方向.酶联免疫吸附测定操作要点1 标本的采取和保存可用作ELISA测定的标本十分广泛，体液（如血清）、分泌物（唾液）和排泄物（如尿液、粪便）等均可作标本以测定其中某种抗体或抗原成份。

有些标本可直接进行测定（如血清、尿液），有些则需经预处理（如粪便和某些分泌物）。

大部分ELISA检测均以血清为标本。

血浆中除尚含有纤维蛋白原和抗凝剂外，其他成份均同等于血清。

制备血浆标本需借助于抗凝剂，而血清标本只要待血清自然凝固、血块收缩后即可取得。

除特殊情况外，在医学检验中均以血清作为检测标本。

在ELISA中血浆和血清可同等应用。

血清标本可按常规方法采集，应注意避免溶血，红细胞溶解时会释放出具有过氧化物酶活性的物质，以HRP为标记的ELISA测定中，溶血标本可能会增加非特异性显色。

血清标本宜在新鲜时检测。

如有细菌污染，菌体中可能含有内源性HRP，也会产生假阳性反应。

如在冰箱中保存过久，其中的可发生聚合，在间接法ELISA中可使本底加深。

一般说来，在5天内测定的血清标本可放置于4℃，超过一周测定的需低温冰存。

冻结血清融解后，蛋白质局部浓缩，分布不均，应充分混匀宜轻缓，避免气泡，可上下颠倒混和，不要在混匀器上强烈振荡。

混浊或有沉淀的血清标本应先离心或过滤，澄清后再检测。

反复冻融会使抗体效价跌落，所以测抗体的血清标本如需保存作多次检测，宜少量分装冰存。

保存血清自采集时就应注意无菌操作，也可加入适当防腐剂。

2 试剂的准备按试剂盒说明书的要求准备实验中需用的试剂。

ELISA中用的蒸馏水或去离子水，包括用于洗涤的，应为新鲜的和高质量的。

自配的缓冲液应用pH计测量较正。

从冰箱中取出的试验用试剂应待温度与室温平衡后使用。

试剂盒中本次试验不需用的部分应及时放回冰箱保存。

3 加样在ELISA中一般有3次加样步聚，即加标本，加酶结合物，加底物。

加样时应将所加物加在LEISA 板孔的底部，避免加在孔壁上部，并注意不可溅出，不可产生气泡。

加标本一般用微量加样器，按规定的量加入板孔中。

每次加标本应更换吸嘴，以免发生交叉污染，也可用一次性的定量塑料管加样。

有此测定（如间接法ELISA）需用稀释的血清，可在试管中按规定的稀释度稀释后再加样。

也可在板孔中加入稀释液，再在其中加入血清标本，然后在微型震荡器上震荡1分钟以保证混和。

加酶结合物应用液和底物应用液时可用定量多道加液器，使加液过程迅速完成。

4 保温在ELISA中一般有两次抗原抗体反应，即加标本和加酶结合物后。

抗原抗体反应的完成需要有一定的温度和时间，这一保温过程称为温育(incubation)，有人称之为孵育，在ELISA中似不恰当。

ELISA属固相免疫测定，抗原、抗体的结合只在固相表面上发生。

以抗体包被的夹心法为例，加入板孔中的标本，其中的抗原并不是都有均等的和固相抗结合的机会，只有最贴近孔壁的一层溶液中的抗原直接与抗体接触。

这是一个逐步平衡的过程，因此需经扩散才能达到反应的终点。

在其后加入的酶标记抗体与固相抗原的结合也同样如此。

这就是为什么ELISA反应总是需要一定时间的温育。

温育常采用的温度有43℃、37℃、室温和4℃（冰箱温度）等。

37℃是实验室中常用的保温温度，也是大多数抗原抗体结合的合适温度。

在建立ELISA方法作反应动力学研究时，实验表明，两次抗原抗体反应一般在37℃经1-2小时，产物的生成可达顶峰。

为加速反应，可提高反应的温度，有些试验在43℃进行，但不宜采用更高的温度。

抗原抗体反应4℃更为彻底，在放射免疫测定中多使反应在冰箱中过夜，以形成最多的沉淀。

但因所需时间太长，在ELISA中一般不予采用。

保温的方式除有的ELISA仪器附有特制的电热块外，一般均采用水浴，可将ELISA板置于水浴箱中，ELISA板底应贴着水面，使温度迅速平衡。

为避免蒸发，板上应加盖，也可用塑料贴封纸或保鲜膜覆盖板孔，此时可让反应板漂浮在水面上。