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蛋白质的分离纯化与定性定量分析


Affinity chromatography
Possible elution strategies:
pH Ion strengh Denature Competitor ligand or analog
Ni-NTA columns
The high affinity of the Ni-NTA resins for 6xHis-tagged proteins or peptides is due to:
Na+
Na+ Na+ Na+
Na+ -
+
Cl-
+
Increased salt concentration
基本操作过程
1. 样品制备,装柱与平衡
2. 上样(样品溶解于A液中)
3. 洗脱:穿透峰,洗脱峰 4. 收集、鉴定
离子交换层析有两种洗脱方式
分步洗脱:用间断地递增的不同离子强度的流动
相分次洗脱样品蛋白的方法;
chrome意为“色彩”,graphy源自希腊文,意为 “写”。“层析”就是“色谱” 。 层析最早由俄国植物学家 Цвет 于1903年创造, 1941年英国学者Martin和Synge提出分配层析, 此后这种方法得到很大的发展。 层析是利用物质在固定相与流动相之间不同的分 配比例,达到分离目的的技术。
白的纯化;
通过免疫亲和层析技术,只需一步,即可纯化带 有标签的目标蛋白。
亲和层析的优点
1. 高效与简便:一旦固定化配体制备好后,操作使 用非常方便; 2. 亲和层析是高度浓缩的过程; 3. 可从样品中去除大量杂质; 4. 可在活性物质中去除理化性质几乎完全相同的但 已失活的那些“杂质”。
亲和层析中的三大通用技术
分离的蛋白质混合物的Mr范围,如Sephadex G-50
的分离范围是1500~30000。 常用的凝胶有Sephadex、Sepharose、Sephacryl、 Superdex等。
Size-exclusion chromatography
Size-exclusion chromatography
Absorbance at 280 is used to identify protein-containing fractions. You can also perform an enzyme specific assay.
凝胶过滤的注意事项
1. 要根据待分离物质的分子量,选择特定的凝胶过 滤基质; 2. 凝胶过滤层析不仅可用于亲水性分子的分离,也 可用于疏水性分子的分离,当用于疏水性分子分 离时,该类层析往往被称为“凝胶通透层析”; 3. 凝胶过滤层析可提供样品的分子量信息; 4. 凝胶过滤的上样量一般在柱床体积的1~5%; 5. 凝胶过滤的样品浓度越大越好,但一般不要超过 100mg/ml。
3- Elute
2- Wash away non bound sample components from solid support
Affinity chromatography
Commonly used affinity columns:
Ni2+ binds to poly Histines (example 6xHis) Specific antibodies (anti-Flag tag) glutathione binds to GST Protein A or G binds antibodies
固定相:固定相是层析的基质。通常是固体(如
吸附剂,凝胶,离子交换剂等),能与待分离的
化合物进行可逆的吸附,溶解,交换等作用。
流动相:在层析过程中,推动固定相上待分离的 物质朝着一个方向移动的液体、气体等,都称为 流动相。柱层析中一般称为洗脱剂,薄层层析时
称为展层剂。
按操作形式不同分类:
柱层析:将固定相装于柱内,使样品沿一个方向移 动而达到分离。 纸层析:用滤纸做液体的载体,点样后,用流动相 展开,以达到分离鉴定的目的。 薄层层析:将适当粒度的吸附剂铺成薄层,以纸层 析类似的方法进行物质的分离和鉴定。 纸层析和薄层层析主要适用于小分子物质的快速检 测分析和少量分离制备,通常为一次性使用; 柱层析是常用的层析形式,适用于样品分析、分离。 生物化学中常用的凝胶层析、离子交换层析、亲和 层析、高效液相色谱等都通常采用柱层析形式。
可溶性:硫酸铵沉淀 等电点:离子交换层析 分子大小:凝胶过滤层析 生物学性质:亲和层析
蛋白质纯化的基本设计原则
原料应易得到,并尽可能富含目的蛋白; 应有特异性的蛋白质检测方法(最重要的因素, 决定了纯化能否成功); 分级分离,先粗后细; 纯化条件尽量温和,避免蛋白失活。
若干区带。
稳态电泳:蛋白质迁移一段时间后达到稳态,带
的宽度不再随时间而改变。
1. 聚丙烯酰胺凝胶电泳
凝胶由丙烯酰胺(Acr)和甲叉双丙烯酰胺(bis) 经共聚合而成,此过程在TEMED和过硫酸铵催化 下进行。 Acr在AP和TEMED的作用下形成单链,随后通过 bis的作用交叉互联形成网状结构,聚合成凝胶。 凝胶的孔径可在较宽范围内变化,以迎合不同的分 离需要。
梯度洗脱:连续改变流动相离子强度的方法。 目前随着层析的自动化,梯度洗脱成为大多数情
况下的首选方案。
分步洗脱分子量不同的蛋白质,通过凝胶分子筛时速度 不同来分离蛋白质的方法。
固定相:凝胶颗粒(gel bead),多孔的网状结构,
其网孔决定了凝胶的分级分离范围,即能被该凝胶
反向层析,或称反相色谱,reverse phase chromatography,是液相色谱分析中最常用的 技术。 当反相色谱用于蛋白质分离时,其原理与疏水层 析基本相同,区别在于: ① 疏水层析的配基疏水性较弱(苯基等),所 以高盐吸附,低盐洗脱; ② 反相色谱配基疏水性强(C18等),所以需要 使用有机溶剂洗脱。
蛋白质的检测方法
蛋白质的活性检测方法:必须快,必须是特异
性的
蛋白质的免疫学检测方法:western-blot,前提
是有特异的抗体
分离纯化的一般程序
1. 前处理(取决于采用的材料)
动物材料处理:剔除结缔组织和脂肪组织
种子处理:去种皮,有机溶剂脱脂
动物细胞破碎:匀浆器、超声波处理 植物组织:研磨,纤维素酶 细菌破碎:超声波,溶菌酶 如果蛋白质定位于某一细胞器,可用差速离心法 将其分离。
3. 亲和层析
以样品的生物活性为依据的分离方法。生物分子的 特点是有专一的活性,如酶与底物的结合,抗原与 抗体,激素与受体,糖与凝集素……等。
将上述作用体系的一方连接到层析基质上,使之固
定化,就有可能分离纯化专一作用的另一方。
Affinity chromatography
Makes use of specific binding interactions between molecules 1- Incubate crude sample with the immobilized ligand
其它杂蛋白分离开来。
常用方法:盐析、等电点沉淀、有机溶剂分级分
离等
特点:简便、处理量大、既能除去大量杂质(包
括脱盐),又能浓缩蛋白质溶液。
3. 细分级分离(fine fractionation) 主要方法: 层析:凝胶过滤、离子交换层析、吸附层析、亲
和层析等
1. 蛋白质的层析分离
层析(chromatography)
怎样纯化蛋白质?
生化学家根据特定蛋白质与其他蛋白质的性质差 异,来分离或纯化它。 可溶性、等电点、分子大小、生物学性质……
可溶性:硫酸铵沉淀 等电点:离子交换层析 分子大小:凝胶过滤层析 生物学性质:亲和层析
1. 离子交换层析
离子交换层析利用物质的电荷与层析载体(离子 交换剂)电荷之间的相互作用而达到分离纯化的 目的,属于吸附层析。 离子交换层析的固定相称为离子交换剂,由基质 和基团两部分组成。
相对离心力/×g 1 000 4 000 15 000 30 000 100 000
时间/min 5 10 20 30 3~10 h
沉降的组分 真核细胞
叶绿体、细胞碎片、 细胞核 线粒体、细菌 溶酶体、细菌细胞 碎片 核糖体
2. 粗分级分离(rough fractionation)
获得蛋白质提取液后,用一定方法,将蛋白质与
① 基质:纤维素、琼脂糖、葡聚糖、苯乙烯-二 乙烯苯等高分子聚合物;
② 基团:共价结合在基质上的带电基团,可分 为正电基团和负电基团。
Ion-Exchange chromatography
+ +
If pH mobile phase =7.2
Then charge of the proteins: (-) (-) (+) (+)
蛋白质具有亲水与疏水两重性,如果在层析基质 上接上疏水的基团,就能在一定条件下与某些蛋
白质的疏水基团相互作用,使之吸附,而达到分
离纯化的目的。
一般情况下,是高盐吸附(1~2M 硫酸铵),降
低流动相的盐浓度,使样品洗脱。 疏水层析的机制与离子交换层析正好相反,因此 两者是互补的。
反向层析与疏水层析原理相同
反相色谱分离蛋白质的原理
反相色谱是最高效的蛋白质层析技术之一
2. 蛋白质的电泳分离
电泳(electrophoresis)
带电粒子在电场中向与自身电荷相反的电极移动 的现象称为电泳。 蛋白质是两性电解质,在不同pH溶液中带不同电 荷,在直流电场中能够泳动。
电泳基本原理
蛋白质在电场中泳动时,受到两种方向相反的力 的作用: 电场力 F=qE,q为带电量,E为电场强度 摩擦力 Ff=fv,f为摩擦系数,v为迁移速度 当蛋白质以恒速运动时,F-Ff=0,即qE=fv, 此时:v/E=q/f=q/6r
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