1、原料的选择早年为了研究的方便，尽量寻找含某种蛋白质丰富的器官从中提取蛋白质。

但至目前经常遇到的多是含量低的器官或组织且量也很小，如下丘脑、松果体、细胞膜或内膜等原材料，- 105 - 蛋白质提取与制备Protein Extraction and Preparation因而对提取要求更复杂一些。

原料的选择主要依据实验目的定。

从工业生产角度考虑，注意选含量高、来源丰富及成本低的原料。

尽量要新鲜原料。

但有时这几方面不同时具备。

含量丰富但来源困难，或含量来源均理想，但分离纯化操作繁琐，反而不如含量略低些易于获得纯品者。

一般要注意种属的关系，如鲣的心肌细胞色素C 较马的易结晶，马的血红蛋白较牛的易结晶。

要事前调查制备的难易情况。

若利用蛋白质的活性，对原料的种属应几乎无影响。

如利用胰蛋白酶水解蛋白质的活性，用猪或牛胰脏均可。

但若研究蛋白质自身的性质及结构时，原料的来源种属必须一定。

研究由于病态引起的特殊蛋白质（本斯.琼斯氏蛋白、贫血血红蛋白）时，不但使用种属一定的原料，而且要取自同一个体的原料。

可能时尽量用全年均可采到的原料。

对动物生理状态间的差异（如饥饿时脂肪和糖类相对减少），采收期及产地等因素也要注意。

2、前处理a、细胞的破碎材料选定通常要进行处理。

要剔除结缔组织及脂肪组织。

如不能立即进行实验，则应冷冻保存。

除了提取及胞细外成分，对细胞内及多细胞生物组织中的蛋白质的分离提取均须先将细胞破碎，使其充分释放到溶液中。

不同生物体或同一生物体不同的组织，其细胞破坏难易不一，使用方法也不完全相同。

如动物胰、肝、脑组织一般较柔软，作普通匀浆器磨研即可，肌肉及心组织较韧，需预先绞碎再制成匀桨。

⑴机械方法主要通过机械切力的作用使组织细胞破坏。

常用器械有：①高速组织捣碎机（转速可达10000rpm，具高速转动的锋利的刀片），宜用于动物内脏组织的破碎；②玻璃匀浆器（用两个磨砂面相互摩擦，将细胞磨碎），适用于少量材料，也可用不锈钢或硬质塑料等，两面间隔只有十分之几毫米，对细胞破碎程度较高速捣碎机高，机械切力对分子破坏较小。

小量的也可用乳钵与适当的缓冲剂磨碎提取，也可加氧化铝、石英砂及玻璃粉磨细。

但在磨细时局部往往生热导致变性或pH 显着变化，尤其用玻璃粉和氧化铝时。

磨细剂的吸附也可导致损失。

⑵物理方法主要通过各种物理因素的作用，使组织细胞破碎的方法。

Ⅰ反复冻融法于冷藏库或干冰反复于零下15～20℃使之冻固，然后缓慢地融解，如此反复操作，使大部分细胞及细胞内颗粒破坏。

由于渗透压的变化，使结合水冻结产生组织的变性，冰片将细胞膜破碎，使蛋白质可溶化，成为粘稠的浓溶液，但脂蛋白冻结变性。

Ⅱ冷热变替法将材料投入沸水中，于90℃左右维持数分钟，立即置于冰浴中使之迅速冷却，绝大部分细胞被破坏。

Ⅲ超声波法暴露于9～10 千周声波或10～500 千周超声波所产生的机械振动，只要有设备该法方便且效果也好，但一次处理量较小。

应用超声波处理时应注意避免溶液中气泡的存在。

处理一些超声波敏感的蛋白质酶时宜慎重。

Ⅳ加压破碎法加一定气压或水压也可使细胞破碎。

⑶化学及生物化学方法Ⅰ有机溶媒法粉碎后的新鲜材料在0℃以下加入5～10 倍量的丙酮，迅速搅拌均匀，可破碎细胞膜，破坏蛋白质与脂质的结合。

蛋白质一般不变性，被脱脂和脱水成为干燥粉末。

用少量乙醚洗，- 106 - 蛋白质提取与制备Protein Extraction and Preparation经滤纸干燥，如脱氢酶等可保存数月不失去活性。

Ⅱ自溶法将待破碎的鲜材料在一定pH 和适当的温度下，利用自身的蛋白酶将细胞破坏，使细胞内含物释放出来。

比较稳定，变性较难，蛋白质不被分解而可溶化。

利用该法可从胰脏制取羧肽酶。

自体融解时需要时间，需加少量甲苯、氯仿等。

应防止细菌污染。

于温室30℃左右较早溶化。

自体融解过程中PH 显着变化，随时要调节pH。

自溶温度选在0～4℃，因自溶时间较长，不易控制，所以制备活性蛋白质时较少用。

Ⅲ酶法与前述的自体融法同理，用胰蛋白酶等蛋白酶除去变性蛋白质。

但值得提出的是溶菌酶处理时，它能水解构成枯草菌等菌体膜的多糖类。

能溶解菌的酶分布很广。

尤其卵白中含量高，而多易结晶化。

1g 菌体加1～10mg 溶菌酶，～内完全溶菌。

于生理食盐水或蔗糖溶液中溶菌，虽失去细胞膜，但原形质没有脱出。

除溶菌酶外，蜗牛酶及纤维素酶也常被选为破坏细菌及植物细胞用。

表面活性剂处理较常用的有十二烷基磺酸钠、氯化十二烷基吡淀及去氧胆酸钠等。

此外一些细胞膜较脆弱的细胞，可把它们置于水或低渗缓冲剂中透析将细胞胀破。

b、细胞器的分离制备某一种生物大分子需要采用细胞中某一部分的材料，或者为了纯化某一特定细胞器上的生物大分子，防止其他细胞组分的干扰，细胞破碎后常将细胞内各组分先行分离，对于制备一些难度较大需求纯度较高的生物大分子是有利的。

尤其近年来分子生物学、分子遗传学、遗传工程等学科和技术的发展，对分布在各种细胞器上的核酸和蛋白质的研究工作日益增多，分离各种细胞器上的各类核酸和特异性蛋白质已成为生物大分子制备工作重要内容之一。

各类生物大分子在细胞内的分布是不同的。

DNA 几乎全部集中在细胞核内。

RNA 则大部分分布于细胞质。

各种酶在细胞内分布也有一定位置。

因此制备细胞器上的生物大分子时，预先须对整个细胞结构和各类生物大分子在细胞内分布匹有所了解。

以肝细胞为例整理如表1表1 蛋白质、酶及核酸在肝细胞内分布情况细胞器名称主要蛋白质及酶类核酸类细胞核精蛋白、组蛋白、核酸合成酶系RNA占总量10%左右DNA 几乎全部粒线体电子传递、氯化磷酸化、三羧酸循环、脂肪酸氧化、氨基酸氧化、脲合成等酶系RNA 占总量5%左右DNA 微量内质网（微粒体）蛋白质合成酶系、羟化酶系RNA占总量50%左右溶酶体水解酶系（包括核酸酶、磷酸脂酶、组织蛋白酶及糖苷及糖苷酶等）高尔基氏体糖苷转移酶、粘多糖及类固醇合成酶系细胞膜载体与受体蛋白、特异抗蛋、ATP 酶、环化腺苷酶、5’-核苷酸酶、琥珀酸脱氢酶、葡萄糖-6-磷酸酶等细胞液嘧啶和嘌呤代谢、氨基酸合成酶系、可溶性蛋白类RNA（主要为tRNA）占总量30%- 107 - 蛋白质提取与制备Protein Extraction and Preparation细胞器的分离一般采用差速离心法。

细胞经过破碎后，在适当介质中进行差速离心。

利用细胞各组分质量大小不同，沉降于离心管内不同区域，分离后即得所需组分。

细胞器的分离制备、介质的选择十分重要。

最早使用的介质是生理盐水。

因它容易使亚细胞颗粒发生聚集作用结成块状，沉淀分离效果不理想，现一般改用蔗糖、Ficoll（一种蔗糖多聚物）或葡萄糖-聚乙二醇等高分子溶液。

水溶液提取：大部分蛋白质均溶于水、稀盐、稀碱或稀酸溶液中。

因此蛋白质的提取一般以水为主。

稀盐溶液和缓冲溶液对蛋白质稳定性好、溶度大，也是提取蛋白质的最常用溶剂。

盐溶液提取：以盐溶液及缓冲液提取蛋白质进常注意下面几个因素。

盐浓度等渗盐溶液尤以～L 磷酸盐缓冲液和碳酸盐缓冲液常用。

L 氯化钠溶液应用也较多。

如6-磷酸葡萄糖脱氢酶用L 碳酸氢钠液提取等。

有时为了螯合某些金属离子和解离酶分子与其他杂质的静电结合，也常使用枸橼酸钠缓冲液和焦磷酸钠缓冲液。

有些蛋白质在低盐浓度下浓度低，如脱氧核糖核蛋白质需用1mol/L 以上氯化钠液提取。

总之，只要能溶解在水溶液中而与细胞颗粒结合不太紧密的蛋白质和酶，细胞破碎后选择适当的盐浓度及PH，一般是不难提取的。

只有某些与细胞颗粒上的脂类物质结合较紧的，需采用有机溶剂或加入表面活性剂处理等方法提取。

PH 值：蛋白质提取液的PH 值首先应保证在蛋白质稳定的范围内，即选择在偏离等电点两侧。

如碱性蛋白质则选在偏酸一侧，酸性蛋白质选择偏碱一侧，以增大蛋白质的溶解度，提高提取效果。

如细胞色素C 属碱性蛋白质，常用稀酸提取，肌肉甘油醛-3-磷酸脱氢酶属酸性蛋白质，用稀碱提取。

某些蛋白质或酶与其分物质结合常以离子键形式存在，选择PH3～6 范围对于分离提取是有利的。

温度：多数酶的提取温度在5℃以下。

少数对温度耐受性较高的蛋白质和酶，可适当提高温度，使杂蛋白变性分离且也有利于提取和进一步纯化。

如胃蛋白酶等及许多多肽激素类，选择37～50℃条件下提取，效果比低温提取更好。

此外提取酶时加入底物或辅酶，改变酶分子表面电荷分布，也能促进提取效果。

有机溶剂提取：有机溶剂提取用于提取蛋白质的实例至今是不多的。

但一些和脂结合较牢或分子中非极性侧链较多的蛋白质，不溶于水、稀盐或稀碱液中，可用不同比例的有机溶剂提取。

从一些粒线体（Mitochondria)及微粒体（Microsome)等含多量脂质物质中提取蛋白质时，采用Morton 的丁醇法效果较好。

因丁醇使蛋白质的变性较少，亲脂性强，易透入细胞内部，与水也能溶解10%，因此具有脂质与水之间的表面活性作用，可占据蛋白质与脂质的结合点，也阻碍蛋白质与脂质的再结合，使蛋白质在水中溶解能力大大增加。

丁醇提取法的pH 及温度选择范围较广（pH3～10，温度-2℃至40℃）。

国内用该法曾成功地提取了琥珀酸脱氢酶。

- 108 - 蛋白质提取与制备Protein Extraction and Preparation丁醇法对提取碱性磷酸脂酶效果也是十分显着的。

胰岛素既能溶于稀酸、稀碱又能溶于酸性乙醇或酸性丙酮中。

以60—70%的酸性乙醇提取效果最好，一方面可抑制蛋白质水解酶对胰岛素的破坏，同时也达到大量除去杂蛋白的目的。

表面活性剂的利用：对于某些与脂质结合的蛋白质和酶，也有采用表面活性剂如胆酸盐及十二烷基磺酸钠等处理。

表面活性剂有阴离子型（如脂肪酸盐、烷基苯磺酸盐及胆酸盐等），阳离子型（如氧化苄烷基二甲基铵等）及非离子型（Triton X-100 、Tirton X-114、吐温60 及吐温80）等。

非离子型表面活性剂比离子型温和，不易引起酶失活，使用较多。

对于膜结构上的脂蛋白和结构，己广泛采用胆酸盐处理，两者形成复合物，并带上净电荷，由于电荷再排斥作用使膜破裂。

近年来研究膜蛋白使用表面活性剂的稀溶液提取时，较喜欢用非离子型表面活性剂。

对提取物的保护：在各种细胞中普遍存在着蛋白水解酶，提取时要注意防止由它引起的水解。

前面所讲的降低提取温度其目的之一也是防止蛋白水解酶的水解。

多数蛋白水解酶的最适PH 在3～5 或更高些，因在较低PH 条件下可降低蛋白质水解酶引起的破坏程度。

低pH可使许多酶的酶原在提取过程中不致激活而保留在酶原状态，不表现水解活力。

加蛋白质水解酶的抑制剂也同样起保护作用，如以丝氨酸为活性中心的酶加二异丙基氟磷酸，以巯基为中心的酶加对氯汞苯甲酸等。

提取溶液中加有机溶剂时也能产生相类似的作用。

蛋白水解酶的性质变化很大，上述条件均视具体对象而变化。