实验材料：蝗虫精巢精母细胞减数分裂固定装片等
低倍镜 观察
在低倍镜下观察蝗虫精母细胞减数分裂固 定装片识别初级精母细胞、次级精母细胞 和精细胞
高倍镜 观察
先在低倍镜下依次找到减数第一次分裂中 期、后期和减数第二次分裂中期、后期的 细胞，再在高倍镜下仔细观察染色体的形 态、位置和数目
绘图
根据观察结果，尽可能多地绘制减数分裂 不同时期的细胞简图
2、用高压锅进行高压蒸汽 灭菌后冷却至室温，标 记甲、乙、丙等。
3、将酵母菌母液分别加入试管各5ml，摇匀后用_ 血球计数板计数起始酵母液个数，做好记录。
4、将各试管送进恒温箱25℃下培养7天。
如何计数： 25格×16格的计数板，除了取其4个
对角方位外，还需再数中央的一个 中格（即80个小方格）的酵母菌数。 当遇到位于大格线上的酵母菌，一 般只计数大方格的上方和右方线上 的酵母细胞（或只计数下方和左方 线上的酵母细胞）。 对每个样品计数三次，取其平均值， 并计算每1ml菌液中所含的酵母菌个 数。
二、实验过程
低温诱导： 培养洋葱根尖，待根长出约1cm左右将整个装置
放入冰箱低温室内（4 ℃）,诱导培养36小时
固定形态：剪取诱导处理的根尖约0.5-1cm,放入卡诺氏液
（甲醇∶冰醋酸=1∶1）浸泡0.5-1小时，以固 定形态，然后用体积分数95%酒精冲洗2次
制作装片： 解离→漂洗→染色（改良苯酚品红染液）
观察细胞的减数分裂
注意取材问题 (1)观察DNA、RNA在细胞中的分布不能选用哺乳动物成
熟的红细胞(无细胞核，也就几乎不含DNA、RNA)； (2)不能用观察叶绿体的材料来观察线粒体(叶绿体中的色
素颜色会掩盖健那绿染色后的颜色变化)； (3)观察细胞的有丝分裂或低温诱导植物染色体数目的变
化时，应注意观察呈正方形的根尖分生区细胞(长方形的细胞 可能是根尖的伸长区或成熟区的细胞，没有分裂能力)；
2.生物学中常用的试剂和药品
试剂 斐林试剂
鉴定(染色)的物 质(结构)
是否加热
还原糖
是
双缩脲试剂
蛋白质
否
苏丹Ⅲ染液
脂肪
否
苏丹Ⅳ染液
脂肪
否
甲基绿
DNA
否
吡罗红
RNA
否
健那绿
线粒体
否
龙胆紫溶液 (醋酸洋红)
染色质(体)
否
颜色
注意事项
砖红色
现用现配
A液与B液不能混 紫色 合，需先滴加A液，
再滴加B液
橘黄色
红色
绿色 红色
DNA、RNA同时 存在时要混合使 用且现用现配
蓝绿色
深紫色 染色前必须漂洗
(红色)
彻底
第三类实验：探究类实验（7个）
• 通过模拟实验探究膜的透性 • 探究影响酶活性的因素（1-p83) • 探究酵母菌的呼吸方式（1-p91) • 模拟探究细胞表面及与体积的关系(1-p110) • 探究植物生长调节剂对扦插枝条生根的作用（3-p51） • 探究培养液中酵母菌数量的动态变化（3-p68） • 探究水族箱（或鱼缸）中群落的演替（3-p112）
（17）探究培养液中酵母菌数量的动态变化
（18） 土壤中动物类群丰富度的研究
（19）探究水族箱（或鱼缸）中群落的演替
网络构建
第一类：显微镜观察类实验（7个）
• 用显微镜观察多种多样的细胞（1-P7） • 观察DNA、RNA在细胞中的分布（1-P26) • 观察线粒体和叶绿体(1-P47) • 观察植物细胞的质壁分离和复原(1-P61) • 观察细胞的有丝分裂(1-P115) • 观察细胞的减数分裂(2-P21) • 低温诱导染色体加倍(2-P88)
（8）叶绿体色素的提取和分离 （9）探究酵母菌的呼吸方式 （10）观察细胞的有丝分裂
选修1： （20）DNA的粗提取与鉴定
（11）模拟探究细胞表面积与体积的关系
（12）观察细胞的减数分裂
（13）低温诱导染色体加倍
（14）调查常见的人类遗传病
（15）探究植物生长调节剂对扦插枝条生根的作用
（16）模拟尿糖的检测
(1)观察：高倍镜使用要诀——先低后高，找移转调
(七)观察细胞的减数分裂(2-p21)
一．实验目的： 通过观察蝗虫精母细细胞减数分裂固定装片，识别减数分裂不同的阶段染色体的形态、 位置和数目，加深对减数分裂过程的理解。 二．实验原理： 蝗虫的精母细胞进行减数分裂形成精细胞，再形成精子。此过程要经过两次连续的细 胞分裂：减数第一次分裂和减数第二次分裂。在此过程中，细胞中的染色体形态、位 置和数目都在不断地发生变化，因而可据此识别减数分裂的各个时期。
(六)低温诱导染色体加倍(2-p88)
一、实验原理
进行正常有丝分裂的植物分生组织细胞，在有 丝分裂后期，染色体的着丝点分裂，子染色体在纺 锤体的作用下，分别移向两极，最终被平均分配到 两个子细胞中去。
用低温处理植物分生组织细胞，能够抑制纺锤 体形成，以至影响染色体被拉向两极，细胞也不能 分裂成两个子细胞，于是植物细胞染色体数目发生 变化。（与秋水仙素作用类似）
插条处理方法：浸泡法或沾蘸法
预实验：本实验的预实验是：先设计一组浓度梯度较大的 实验进行探索,在此基础上设计细致的实验.
5、步骤： 1）设置生长素类似物的浓度梯度：将生长素类似物母液分别 配成浓度为0.2、0.4、0.6、0.8、1.2、1.4、1.6、1.8、 2mg/ml的溶液，另有清水做空白对照。 2）制作插条：枝条剪成长约5-7cm的插条，插条的形态学上 端为平面，下端要削成斜面，留3~4个芽。 3）分组处理：将制作好的插条，分成N组（每组不少于3个 枝条），分别将其基部浸泡在上述不同浓度溶液以及清水中， 处理几小时至一天。 4）培养实验：设置N个相同的水培装置，加入等量的完全营 养液，在相同的外界条件下，分别培养上述处理过的插条，注 意保持温度为25-30℃
(十五) 探究植物生长调节剂对扦插枝 条生根的作用(3-p51)
3、常用的生长素类似物： NAA(萘乙酸), 2,4-D, IPA(苯乙酸). IBA(吲哚丁酸)等
4．设计实验： 选择生长素类似物—配制生长素类似物母液—设置生长
素类似物的浓度梯度—制作插条—分组处理插条—进行实 验—观察记录—分析实验结果，得出结论。 配制生长素类似物母液：5mg/ml（用蒸馏水配制，加少 许无水乙醇以促进溶解）
3.溶解DNA——2mol/LNaCl溶液 实验步骤 4.析出DNA——0.14mol/LNaCl溶液
5.提纯DNA——95％酒精
6.再溶解DNA——2mol/LNaCl溶液 7.鉴定DNA——二苯胺加热鉴定
DNA鉴定能否把二苯胺则换成用甲基绿？
• DNA粗提取与鉴定这个实验，DNA鉴定则换成用二苯胺，在这个 DNA粗提取过程中，用改变氯化钠浓度办法将蛋白质与DNA分开， 用冷酒精处理进一步将DNA与RNA、蛋白质分开。一系列的操作 就是要获得纯度较高的DNA，最后获得的纯度较高的DNA不能排 除有RNA，所以此时用甲基绿鉴定DNA、RNA都被染成绿色，所以 不能说绿色一定是DNA。而改用二苯胺就不一样了，DNA和二苯 胺反应的产物成蓝色，RNA则没有这种颜色反应，所以用二苯胺 鉴定呈蓝色的一定是DNA，并且蓝色深浅与DNA含量高低有关。
（十六）探究培养液中酵母菌数量的动态变化(3-p68)
[方案设计] 一、提出问题 培养一种酵母菌种群的数量是怎样随时间变化的？ 二、猜想假设
酵母菌种群的数量随时间呈S型增长变化。
三、设计实验 ①全班同学分成甲、乙、丙等若干实验组。②分
别用等量培养液，在相同适宜环境中培养等量酵母菌。 ③每天用血球计数板，采用抽样检测的方法计数一个 小方格内的酵母菌数量并作记录，连续7天。④7天后， 各组向全班汇报本小组7天的数据，算出每一天数据 的全班平均值，根据平均值画出酵母菌种群数量的增 长曲长。
【例子】将样液稀释100倍，采用血球计数板(规格 为1mm×1mm×0.1mm)计数，观察到的计数室中细胞 分布图见图3，则培养液中藻细胞的密度是 1X108 个/mL 。
三、现象观察 每天同一时间，各组取出本组的试管，用血球计数 板计数酵母菌个数，并作记录，连续观察7天。
菌数 时间
（2.5 ×104个）
教材基础实验
必修二、三部分
考 必修1 纲 要 求 的 实 必修2 验
必修3
（1）观察DNA和RNA在细胞中的分布
（2）检测生物组织中的还原糖、脂肪和蛋白质
（3）用显微镜观察多种多样的细胞
（4）用高倍镜观察线粒体和叶绿体
（5）通过模拟实验探究膜的透性
（6）观察植物细胞的质壁分离和复原
（7）探究影响酶活性的因素
→制片（同有丝分裂）
观察： 视野中既有正常的二倍体细胞,也有染色体数目
发生改变的细胞.
说明： (1)以上实验除了“观察植物细胞的质壁分离与复原”使用低倍镜即可 外，其余均需使用高倍镜。 (2)鉴定类实验中的“脂肪的切片法鉴定”、探究性实验中的“培养液 中酵母菌种群数量的动态变化”都需用显微镜观察。 2．显微镜相关的知识
[方案设计] 一、提出问题 培养一种酵母菌种群的数量是怎样随时间变化的？ 二、猜想假设 酵母菌种群的数量随时间呈S型增长变化。
[实验过程] 一、材料用具 菌种、无菌马铃薯培养液或肉汤培养液、试管、血球 计数板（1mm×1mm×0.1mm方格）、滴管、显微 镜等。 二、方法步骤和记录
1、取相同试管若干支，分别加入5ml肉汤培养液， 塞上棉塞。
7天中的变化曲线。
2、培养液酵母菌种群数量随时间呈_S_型增长变化。
(天)
起始
1
2

4
5
6
7
组别
甲 乙 丙 … 平均
…… … … … … … …
[误区警示] 1、从试管中吸出培养液进行计数时，应将试管振荡几次，以 便使酵母菌均匀分布，提高计数的代表性和准确性。 2、对于压在小方格界线上的酵母菌应计数同侧相邻两边上的 菌体数，另两边不计数。