电转染是利用直流电脉冲瞬时电击细胞，以增大细胞膜通透性或使细胞膜形成小孔，从而使小分子物质，如染料、寡核苷酸、肽等物质进入细胞。

有时甚至可以转染大分子物质，如DNA、RNA蛋白质等。

电转染有效率高、费时少、成本低等特点，故被广泛采用。

但是电击过量所造成的细胞死亡或是电击不足所造成的转染失败，成为该项技术应用的一大难题。

所以我们在进行电转染实验之前，首先得对转染相关参数进行优化，以使转染效率最大化。

影响电转染效率的因素有：
1 •脉冲波形
2. 电场强度
3. 脉冲时间
4. 脉冲次数
5. 电击缓冲液
6. DNA/RNA 浓度
下面我们将详细讨论这六个因素对电转染效率的影响。

1 •脉冲波形
脉冲波形主要分为两种：1、方波脉冲；2、指数递减波脉冲。

方波脉冲：电压瞬间升至预设电压，保持电压放电，然后瞬间终止放电。

一般哺乳动物细胞电转染时选择方波脉冲，有较高的转染效率和细胞存活率。

递减。

一般这种波形的脉冲电转染适用于细菌、酵母菌、昆虫细胞
2 •电场强度
电场是电转染的重要因素，细胞在电场的作用下，膜通透性增加或是形成小孔，以完成转染过程。

因此电场强度是应该被优化的主要参数。

电场强度不能过高，过高会增加细胞的死亡率；也不能过低，过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。

因此，一个适宜的电场强度至关重要。

在优化电场强度时应该考虑3
个因素：
1）电击杯电极间距
一般而言电场强度为1-2KV/cm为佳，实验室中大多采用1.25KV/cm。

因此
如果电极距离为2mm，那么电压应该为：1.25*0.2=0.25KV=250V
2）细胞直径
一般而言，直径越小的细胞需要越高的电压，而直径越大的细胞需要越小的电压。

3）温度
大多数哺乳动物细胞可在室温下有效转染。

但是高电压、长脉冲时间或是多
次脉冲，都会使细胞温度升高，从而加大细胞死亡率，并降低转染效率。

因此在低温环境下转染，可降低细胞死亡率、提升转染效率，另外低温环境可延长孔洞开放时间，以使细胞更多地捕获外源分子，如质粒等等。

而在某些细胞转染中，低温环境会伤害细胞，降低转染效率。

面给出在2mm电极距离的电击杯中的相关转染参数:
3. 脉冲时间
脉冲时间的选定主要取决与脉冲波形。

在方波脉冲中，脉冲时间可直接设定。

在指数递减波脉冲中，脉冲时间是指电压衰减至初始电压1/3时所用的时间，等于电容（C）与电阻（R）的乘积，单位是ms。

在参数优化中，增加电压应当降低脉冲时间，而减小电压则应当增大脉冲时间。

4. 脉冲次数
一般而言，对于大多数细胞类型都选择单次脉冲。

而在有些情况下可能会用到多次脉冲，因为低电压、短脉冲时间、多次脉冲可有效避免细胞损伤。

例如，体内电转染时，电压一般设定在10-100V，脉冲时间为30-50 s。

5•电击缓冲液
大多数电击缓冲液采取高电导的电击缓冲液，如PBS HBSS标准细胞培养基、血清培养基。

有些细胞电转染推荐使用低渗缓冲液，此时应使用更低的电压。

细胞在低渗环境中易受伤害，故时间不可太长。

原核细胞需要高电阻的缓冲液，一般大于3000 Q,因此应尽量去除反应体系中的离子，以减少电弧产生从而伤害细胞。

6. DNA/RNA 浓度
一般而言，DNA浓度为5-20卩g/ml。

然而也有例外，比如有些电转染中DNA 浓度为50卩g/ml能够达到最高转染效率。

小分子量的分子转染时（siRNA/miRNA，应使用高电压、短脉冲时间。

大分子量分子转染时（DNA），应使用低电压，长脉冲时间。

如果Buffer中含有EDTA或是Tris则会降低转染效率。