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动物实验的基本技术和方法(1)

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实验动物的给药剂量
D2=D1×K2/K1 ×3 W1/W2
D:药物剂量(μg•kg-1•d-1) W:动物体重(kg) K:常数
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不同种类动物的K值
名称 K值 名称 K值 人 10.6 家兔 10.1 猴 11.8 大鼠 9.1 狗 11.2 豚鼠 9.8 猫 9.8 小鼠 9.1
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口服给药
一般检查 实验前通过对动物的外
观、活动、食欲、体温、脉博和呼吸 等生命体征的观察和检查,对实验动 物进行初步筛选。
特殊检查 实验前对动物进行血象、
生化及血压、心电图、X射线透视等 检查。
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各种成年动物的正常体温(直肠温度,℃)
动物名称
猿、猴 狗 猫 家兔 豚鼠 39.0
体温(℃) 动物名称
38.6 39.0 38.7 39.0
38.6
大鼠 小鼠
鸡 鸽
体温(℃)
39.0 38.0 41.7 42.0

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家兔体温检查方法
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用家兔进行热原检测
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气温与家兔体温的关系
气 温 (℃) 5 10 20 35 40
家 兔 体 温 (℃) 37.5 38.0 38.7 40.5
41.6
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实验用动物的体重要求
动物 狗 猴 兔 豚鼠 大鼠 小鼠
经口给药剂量准确,对动物安全, 是动物实验中常用的给药方法,尤其 是移植实验中受体动物的肠道灭菌处 理,必须口服肠道不吸收的抗生素。
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大白鼠灌胃方法
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1.什么是传统机械按键设计?
传统的机械按键设计是需要手动按压按键触动PCBA上的 开关按键来实现功能的一种设计方式。
传统机械按键结构层图:

PCBA
血管、淋巴管吸收进入血液循环。
器材:5ml注射器1支、生理盐水、烧杯、 酒精、碘酒、棉球。
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皮下注射
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皮下注射
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方法步骤: (1) 注射部位:选大鼠的项背部的皮下。 (2) 常规消毒注射部位的皮肤,用注射针头
体 重 (kg) 10 ~ 15 3~5 2 ~ 2.5
0.45 ~ 0.70 0.18 ~ 0.25 0.02~0.03
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正常动物每分钟脉搏次数
动物 猪 羊 狗 兔 豚鼠 大鼠 小鼠
脉 搏 次 数 (次/分) 60 ~ 80 70 ~ 80 80 ~ 120
120 ~ 150 230 ~ 350 200 ~ 360 520~780
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编号标记
目的:为了分组 要求:清晰、耐久、简便、适用
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颜料标记 颜料标记适应于较大
量的大、小鼠等小动物的编号。常 用的颜料有 5%苦味酸溶液 (黄色) 2%硝酸银溶液 (咖啡色) 0.5%中性品红溶液 (红色) 煤焦油的酒精溶液(黑色)。 编号原则:先左后右,从上而下。
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小鼠和大鼠标号示图 9
坦)
硫喷妥 钠 巴比妥 钠
苯巴比 妥钠
动物
犬、猫、兔
大、小鼠、豚鼠 鸟类
犬、猫、兔
鼠类 犬、猫、兔
大、小鼠、豚鼠
鸟类 蛙类 犬、猫、兔 大鼠 犬 猫
兔 鸽 鼠类 犬、猫 兔 鸽
给药方法
静脉 腹腔、皮下
腹腔
肌肉 静脉 肌肉、腹腔 直肠 腹腔 静脉、腹腔
直肠
肌肉
肌肉
皮下淋巴结 静脉、腹腔 静脉、腹腔
静脉 腹腔 口服 腹腔 腹腔、肌肉 皮下 腹腔、静脉 腹腔 肌肉
若是购入或领取清洁级以上实验动物,应 采用带有空气过滤膜的无菌运输罐或带过滤 帽的笼盒运输,并严格检查其密封状况。
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动物外观健康检查主要内容: ①皮毛:有无光泽、出血、干燥; ②眼:有无眼屎、流泪、白内障、角膜损
伤等; ③耳:有无外伤、耳壳曲折、中耳炎等; ④四肢:有无弯曲、脱臼、外伤、关节炎; ⑤肛门:有无下痢、血便、脱肛等。
第十章 动物实验的基本技术和方法
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动物实验
在医学教学、科研和医疗工作中,不 论是从事基础医学还是临床医学或预防医 学,都需要用实验动物来进行各种实验。 通过对动物实验的观察、分析,来研究需 要解决的问题,动物实验方法已成为研究 工作中必不可少的重要手段。
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动物实验
整体实验:LD50、活存时间、活存率 离体实验:器官灌注、组织切片、细胞培养
灌胃量: 80-150ml/只/次。 注 意:在灌胃过程中, 避免误插入气管。
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兔灌胃方法 68
狗灌胃方法
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猪灌胃方法
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注射给药 注射给药剂量准确,作
用快,是动物实验中常用的给药方法。 给药时应注意针头号码的选择(鼠类4#,狗-6#,马-9#)。
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皮下注射 原理:将药液注入皮下结缔组织,经毛细
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钳式长柄捕狗夹
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驯服动物的固定
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猪固定在木制三角架上
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布制猪固定带
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猪的悬吊式固定
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猕猴的抓取
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猕猴的抓取
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猪的强制性固定
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猕猴固定架
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猕猴固定架
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猕猴的固定
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猕猴的固定
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猕猴的固定与后肢静脉血的抽取 48
动物实验的基本检查
基本检查的目的是保证实验用动物 均正常。
要求:不损伤实验动物 不影响观察指标 实验者不被动物咬伤 保证实验顺利进行
小心细致、大胆敏捷,切忌粗暴。
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小鼠的抓取 24
小鼠的抓取保定: 器材:小鼠饲养盒+盒盖1套。
方法步骤: 1、用右手拇指和食指捏 住小鼠尾巴中部将小鼠提 起,放在饲养盒盖上。 2、用左手拇指和食指迅速、 准确地捏住小鼠的两耳后、 颈背部的皮肤,将小鼠提起。
烙印 用号码烙印钳在兔、豚
鼠的耳朵烙号,然后在烙印部 位涂上溶在酒精中的黑墨或煤 粉。猪等大动物也可用此法在 臀部皮肤烙号标记。也有将实 验分组编号烙在狗脖套的皮带 颈圈上。
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纹身 用刺数钳在局部皮
肤(兔多在耳朵内侧,猴多 在前胸皮肤)刺上号码,再 用棉签蘸上墨汁酒精涂沫 刺号,多用于猴、兔的编 号。
兔灌胃用张口器及胃管
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步骤: 1、将兔放进保定架内,助手用手轻轻压住 兔的背部,避免兔的挣扎。 2、灌胃者用在手拇指和中指挤压兔两颊, 将下颌挤开使兔被动张口。 3、右手将开口器从一侧口角插入口腔并 固定。 4、用泡在石蜡油中的胃管,经开口器的 孔插入,向前推进约15cm,可达胃内。
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5、在插管时应将胃管另一端泡在水中 确认没有冒气泡,即可用注射器经 胃管注入药液。
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号牌 将不锈钢或铝质号
牌固定在狗或猴的链条或 颈圈上。兔号牌则固定在 耳朵上。少量动物时也可 将号牌挂在笼具上,但应 防止抓取操作后将动物放 错笼具而混淆编号。
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毛色 利用动物的毛色将其编号,用于 少量的狗、马、猫、猴等大动物的编 号。 剪毛 用剪刀在狗背上剪出号码,此方 法简单,字迹清楚、可靠,便于观察。
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3、翻转左手掌,以左手掌心和中指夹 小 鼠背部的皮肤,使小鼠整个呈一条 直线。 4、用左手无名指 压住小鼠背部的 皮肤,小指压住 小鼠的尾巴根部。 5、松开捏住小鼠尾 巴的右手拇指和食指。
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大鼠的抓取和固定
1. 戴上防护手套,抓住大鼠的尾中部或根部从 笼具中取出后立即置于笼盖或实验台上。
2. 右手抓住大鼠尾根部,将大鼠置于笼盖或其 它粗糙表面上,其它粗糙表面上,轻轻向后 拉尾。
剂 量(mg/kg) 1.0
1.4~1.7 2.0~2.5
2.5~5.0 0.8~1.0 0.8~1.0
1.0 10 2.5~3.3
5.0
7.0
6.3
2~3 1.3~2.5 5.0~10 1~1.2
4.0 4.0 4.0 6.1 2 2.2~3.0 4.3~6.0 6.0
常用浓度% 3 3 2
2 5 10 10 10 30
5
二、动物饲养室及饲养器具准备
饲养室面积应根据所购入动物的数量来确定。 饲养动物的器具等,应在动物购入前准备好。 垫料、饲料应按购入动物数量准备。各笼箱的 编号及卡片、饲喂动物所用器材,如给饵器、 粪便托盘、搬运车、台秤、饲料桶、电源插板 等也应准备放好。动物饲养室的环境应根据所 计划使用动物的微生物控制级别来进行准备, 属于屏障系统的应调整好送排风系统、空气净 化系统,控制好温度、湿度、风速、噪声等环 境因素。动物饲养室在启用前,应对设施、笼 具及用具等统一进行彻底消毒。
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方法2:
器材:兔保定架1个。 步骤: 1、打开保定架的上盖,抓取并将兔放进架 内,迅速关上保定架的上盖。 2、右手抓住兔耳朵将头部拉过保定架的卡 栓,将兔的脖子保定。 3、如果兔挣扎,可用手 在它的背上轻轻抚摸, 使其安静。
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家兔的兔台固定方法
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猫的抓取与固定方法 33
比格狗照射固定架

开关 键
传统机械按键设计要点: 1.合理的选择按键的类型, 尽量选择平头类的按键,以 防按键下陷。 2.开关按键和塑胶按键设计 间隙建议留0.05~0.1mm,以 防按键死键。 3.要考虑成型工艺,合理计 算累积公差,以防按键手感 不良。
方法步骤:
1、将灌胃针连接在注射器上,吸入一定量的药 液。
打孔 用打孔器在兔耳上打孔或剪口。
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动物被毛的去除
为了排除动物被毛对实 验操作和观察结果的影响, 实验中需要去除或剪短动 物的被毛。
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剪毛法 拔毛法 剃毛法 脱毛法
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脱毛剂
1) 8%NaS NaS 8g+水至100ml;也可用硫化钠8克、 淀粉7克、甘油4克、硼砂1克,用自来水加至 100ml。 常用于兔及小鼠等小型动物的脱毛。上 述配制好的溶液5~7ml可用于 15×12cm2皮肤的 脱毛。 2) 10%NaS 硫化钠10克、氧化钙15克,自来水 加至100ml。常用于狗、猪等较大动物的皮肤脱 毛。 3) 硫化硷 染土布用硫化硷10克,生石灰15克, 加自来水至100ml溶解后即可应用。常用于实验 狗的皮肤脱毛,涂上脱毛剂2~3分钟狗毛即可 成糊状,迅速用自来水将局部脱毛皮肤冲洗干 净。此方法脱毛干净,脱毛后局部皮肤不充血。
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