食品与药品 Food and Drug 2011年第13卷第03期 93 苦菊提取物的抗氧化活性研究 陈超杰 ,秦海林 ,邓安瑁 ,王爱平 (1.新药安全评价研究中心,2.中草药物质基础与资源利用教育部重点实验室 中国医学科学院/北京协和医学院,北京100050) 摘要:目的研究苦菊提取物的体外抗氧化作用。方法苦菊经95%乙醇加热回流、石油醚脱脂、乙酸乙酯提取和大孔吸 附树脂乙醇洗脱,取6O%乙醇的洗脱液挥于后得到提取物。通过二苯代苦味酰自由基(DPPH·)和超氧阴离子(O 一·)清 除能力的检测,及2,2’.偶氮.双.(2.脒基丙烷)氯化二氢(AAPH)诱导的红细胞溶血模型的测试,总体评价该提取物的体 外抗氧化活性。结果该提取物能有效清除DPPH·和0 。,其清除能力呈浓度依赖性,且清除O 。·的能力比阳性对照药维生 素C更佳。同时,该提取物能有效防 ̄AAPH诱导的兔红细胞溶血,提示具有预防机体细胞组织氧化应激损伤的作用。结 论苦菊提取物具有很好的抗氧化活性,为其在食品和药品的抗氧化剂应用提供参考。 关键词:苦菊;二苯代苦味酰自由基;超氧阴离子;红细胞溶血;抗氧化活性 中图分类号:11282。7 文献标识码:A 文章编号:1672.979X(2011)01—0093—04 Antioxidant Activity of Extract from Cichorium e//divia L. CHEN Chao ̄ie ,QIy Hai—lin ,DENG An-jun ,WANG Ai—ping f1.NewDrugSafetyEvaluation Center,2.KeyLaboratoryofBioactiveSubstancesandResources Utilization of Chinese Herbal Medicine,Institute ofMateria Medica Chinese Academy ofMedical Sciences&Peking Union Medical College,Beijing 1 00050,China) Abstract:Objective To study the antioxidant activity of extract from Cichorium endivia L—Methods C endiv L. was refluxed with 95%ethanol and defatted with petroleum ether,and then was extracted by ethyl acetate and purified
收稿日期: 基金项目: 作者简介: 通讯作者
2010—12—10 “重大新药创制”科技重大专项课题(2008ZX09305—001) 陈超杰(1982一),男,广西梧州人,博士研究生,研究方向为药物安全性评价 王爱平,男,博士生导师,研究方向为药物安全性评价E—mail:wangaiping@imm.ac.ca
素、维生素等。XF.1经形态特征,16S rDNA序列比 对及系统发育树分析,与Aranicolaproteolyticus有99.7% 同源性,初步认为同种。Aranicola proteolyticus为近 年新发现的肠杆菌科新菌种,目前国际上正式命名尚 未公布,因此关于该菌的文献报道甚少,1999年Park 等 发现该菌,并初步研究了其生理特性。但该菌所 产分泌物的种类以及是否有致病性尚不明确,这是决 定应用价值的最关键问题,今后以此为研究方向进行深 入研究。
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自由基是导致油脂类产品氧化变质和造成机体氧 化应激损伤的主要因素,因此具有清除自由基能力的 抗氧化剂是防止食品变质和防治氧化损伤相关疾病的 最主要手段之一【l】。 苦菊(Cichorium endivia L.)是菊科菊苣属的一 种栽培植物,学名栽培菊苣,又称苦苣 。苦菊源自 欧洲,是欧美地区常用的色拉或食用蔬菜。有研究发 现,苦菊中含有一定量的抗氧化活性成分,是其防治 多种与氧化应激损伤相关的慢性疾病的理论基础p】。 我国已成功引种栽培苦菊并出售,其清甜爽口的特点 也逐渐受到中国老百姓青睐。但至今仍缺乏对国内栽 培的苦菊生物活性的研究报道。本文提取分离苦菊, 并通过体外模型检测其抗氧化活性,为进一步探究苦 菊在食品和医药领域的应用提供依据。 1材料 1.1原料 苦菊购自北京新发地蔬菜批发中心,经鉴定为菊 科菊苣属植物苦菊。 1.2试剂 二苯代苦味酰自由基(DPPH·)、2,2’.偶氮. 双一(2一脒基丙烷)氯化二氢(AAPH)、水溶性维生 素E类似物(Trolox)、维生素C、乙二胺四乙酸二 钠(EDTA.Na,)、还原型辅酶I烟酰胺腺嘌呤二核 苷酸二钠(NADH—Na )、吩嗪硫酸甲酯(PMS)和硝 基四氮唑蓝(NBT)均购自Sigma.Aldrich公司,乙 醇、石油醚、乙酸乙酯、二甲基亚砜(DMSO)等 试剂皆为国产分析纯。大孔吸附树脂购自日本三菱 (DIAION HP20)。 1.3仪器 酶标仪(美国MD,Spectra Maxl90);高速冷 冻离心机(德国Sigma,3K18);电子天平(北京赛 多利斯天平有限公司,BS201S)。 1.4动物 雄性新西兰家兔1只,12~15周龄,体重3.0 kg, 购自北京富豪实验动物养殖中心。单笼饲养,自由进 食饮水。 2方法 2.1苦菊提取物的制备 苦菊干燥全草5.8 经95%乙醇回流提取3次(80 L×2 h、70L×1 h、68LZ1 h),过滤合并滤液,减 压浓缩所得浸膏混悬于70%乙醇溶液中。混悬液继续 经石油醚提取4次(2,1.5,1.5,1.5 L),所得到的 乙醇层经减压浓缩至无醇味,加水混悬约2.3 L,并经 乙酸乙酯提取3次(1.5,1.2,1.2 L),提取后所得的 水层约2.2 L,过大孔吸附树脂,分成水部分(14 L) 和60%乙醇部分(15 L)。其中6O%乙醇部分浓缩 后挥千得到重约40 g的棕色粉状颗粒,即为苦菊提取 物。 2.2 DPPH·清除能力的检测 DPPH·清除能力检测的操作步骤根据文献[4】略 加调整:反应体系在96孔板中进行,溶于DMSO的 待测样品每孔加入20 L,随后迅速加入100 Ixmol/L 的DPPH·(溶于无水乙醇)180 ,震荡混匀后采用 酶标仪于5l7 nm波长处检测吸光度( ),同时以 20 的DMSO代替待测液作为空白对照,空白调零 孔为20 DMSO和180 无水乙醇。经过多个时间 点的检测,以不再发生改变的 值作为最终测量值。 DPPH·清除率的计算公式为: DPPH·清除率=[1一 J.4。)】X 100% 其中,A 为待测样品组 值,A 为空白对照组