一、大肠杆菌质粒DNA的提取
质粒DNA的提取是从事基因工程工作中的一项基本实验技术，但提取方法有很多种，以下介绍一种最常用的方法：碱裂解法。

此方法适用于小量质粒DNA的提取，提取的质粒DNA可直接用于酶切、PCR扩增、银染序列分析。

方法如下：
1、接1%含质粒的大肠杆菌细胞于2ml LB培养
基。

2、37℃振荡培养过夜。

3、取1.5ml菌体于Ep管，以4000rpm离心3
min，弃上清液。

4、加0.lml溶液I(1％葡萄糖，50mM/L EDTA
pH8.0，25mM/L Tris-H Cl pH8.0)充分混合。

5、加入0.2ml溶液 II(0.2 mM/L NaOH，1％
SDS)，轻轻翻转混匀，置于冰浴5 min 。

6、加入0.15m1预冷溶液III(5 mol/L KAc，p
H4.8)，轻轻翻转混匀，置于冰浴5 min 。

7、以10，000rpm离心20min，取上清液于另
一新Ep管
8、加入等体积的异戊醇，混匀后于?0℃静置1
0min。

9、再以10，000rpm离心20min，弃上清。

10、用70％乙醇0．5ml洗涤一次，抽干所有
液体。

11、待沉淀干燥后，溶于0．05mlTE缓冲液中
二、质粒DNA琼脂糖凝胶电泳鉴定
琼脂糖是从海藻中提取出来的一种线状高聚物，应选用电泳纯的，琼脂糖此级产品筛除了抑制物和核酸酶，而且用溴化乙锭染色后荧光背景最小。

(1)琼脂糖凝胶电泳装置
由于琼脂糖凝胶电泳既要求不高，而适应性又强，在过去15年里已成功地设计了形形色色及大大小小的电泳槽。

对这些装置的选择主要是依据个人的喜恶。

使用最普遍的装置是Walt er Schaffner发明的水平板凝胶。

水平板凝胶通常在一块可安放于电泳槽平台的玻璃板或塑料盘上灌制。

在有些装置中，则可将凝胶直接铺在平台上。

凝胶恰好浸在缓冲液液面下进行电泳。

凝胶的电阻几乎与缓冲液的电阻相同，所以有相当一部分的电流将通过凝胶的全长。

（2）琼脂糖凝胶的制备
琼脂糖凝胶的制备是将琼脂糖在所需缓冲液中熔化成清澈、透明的溶液。

然后将熔化液倒入胶模中，令其固化。

凝固后，琼脂糖形成一种固体基质，其密度取决于琼脂糖的浓度。

通贯凝胶的电场接通后，在中性pH值下带负电荷的DNA向阳极迁移。

（3）琼脂糖凝胶的染色
电泳完毕，将琼脂糖凝胶转移入含EB的染液中，染色10分钟，取出紫外灯下观察。

三、质粒DNA热激法转化大肠杆菌
感受态的细胞可以摄入外部溶液中的DNA，而常态的细胞却不能，所以要转化质粒DNA进入大肠杆菌必须首先制备感受态的大肠杆菌细胞。

1、取1%大肠杆菌E.coli接种于含2ml LB培
养基的试管中，37℃振荡培养过夜
2、取0.1ml过夜培养物转种于含10ml LB培
养基的三角瓶中，37℃振荡培养3h至OD600=0.
3
3、然后把培养物倒入1.5ml离心管中，冰浴1
0min。

4、在4℃下以4000rpm离心5min，去上清液
5、把菌体悬浮于15m1冰冷的0.1M CaCl2溶液
中，置冰上30min
6、然后再在4℃下以4000rpm离心10min，去
上清液
7、将菌体悬浮于0.1ml CaCl2溶液中，冰浴放
置4-12hr备用。

四：制备好感受态细胞后，接下来就是质粒DNA转化入大肠杆菌细胞的过程。

但要注意的是感受态细胞最好是新制备的，因为保存一定时间的感受态细胞会使转化率降低；此外DNA的浓度也要注意，不能太高。

1、取新制备的一管感受态细胞。

2、取0．03ml感受态细胞转和4ng质粒DNA
混匀，置冰浴30min
3、将 Ep管置于42℃水浴中热冲击2分钟，
立即置于冰上1分钟。

4、在 Ep管中加70u1 LB培养基混匀，37℃培
养30min
5、涂在含适当浓度抗生素的LB平板上。

6、37℃培养过夜，长出的菌斑既为阳性克隆。

五、线形质粒DNA 5'-粘性末端去磷酸
经限制性内切酶酶切的质粒DNA 5'端均带有磷酸集团，如用此载体直接转化大肠杆菌，其自身环化几率非常高，影响连接、转化效率。

因此一般酶切的质粒DNA要经脱磷，使用碱性磷酸酶(CIAP)去除5'端磷酸集团。

方法如下：
1、质粒DNA和CIAP以及BUFFER 37℃水浴30
min
2、补充CIAP 再37℃水浴30min
3、加入50mM EDTA至终浓度5mM 75℃加热10
min 失活CIAP
4、冷却至室温，酚-氯仿抽提，乙醇沉淀浓缩。

5、抽干溶液，加适量TE溶解。

六、聚合酶链式反应（PCR）技术
PCR是一种选择性体外扩增DNA或RNA片段的方法。

其特异性是由两个人工
合成的引物序列决定的。

所谓引物就是与待扩增DNA片段两翼互补的寡聚核苷
酸，其本质是ssDNA片段。

待扩增DNA模版加热变性后，两引物分别与两条DN
A的两翼序列特异复性。

此时，两引物的3'端相对，5'向背。

在合适的条件下，
由Taq DNA聚合酶催化引物引导的DNA合成，既引物的延伸。

上述过程是由温
度控制。

这种热变性-复性-延伸的过程就是一个PCR循环。

PCR就是在合适条件
下的这种循环的不断重复。

理论上扩增产物量成指数上升，既n个循环后，产
量为2n拷贝。

典型的PCR操作过程如下：
1、反应体系：
BSA（牛血清白蛋白20mg/mL）1uL两种引物(5uM)各1uL 10倍Buffer 1uL dNTP(2mM) 1uL 模版DNA(浓度各异）1uL Taq酶1uL(0.5U)
水3uL总体积：10uL
（反应溶液可置于毛细管或薄壁离心管中扩增）
2、操作过程：（所用仪器为AMP1605热循环PCR扩增仪
预变性：94℃ 90秒
循环过程：94℃ 1秒48℃ 1秒72℃ 40秒 40个循环升温速率1
延伸：72℃ 5分钟
3、检测：琼脂糖电泳检测。