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冰冻切片实验技术

实验技术:组织切片的制备点击次数:350 发布日期:2009-11-9 来源:长沙赢润仅供参考,谢绝转载,否则责任自负组织切片的制备二)切片方法-细节注意1 切片方法的选择光镜和免疫组化研究的切片一般为5μm,而神经组织切片为20-100μm,有利于追踪神经纤维的走行。

1.1 冰冻切片是免疫组织化学中最常用的一种切片方法,能够最大量的保存抗原、操作简便,主要适用于不稳定的抗原(如检测细胞膜的某些抗原成分),但标本来源受限。

冰冻切片时,组织中水分易形成冰晶,影响抗原定位。

冰晶小而多,对组织结构损害大。

因此可采用以下措施减少冰晶的形成:①速冻,缩短组织从-33~-43℃的时间。

具体方法是:⑴干冰-丙酮(乙醇)法:将150-200ml丙酮(乙醇)装入小保温杯内,逐渐加入干冰,直至饱和呈粘稠状,再加干冰不冒气泡时,温度可达-70℃。

用一小烧杯(50-100ml)内装异戊烷约50ml,再将烧杯缓慢置入干冰丙酮(乙醇)饱和液内,至异戊烷温度达-70℃时即可使用。

将组织(约1cm×0.8cm×0.5cm)t投入异戊烷内速冻30-60s后取出,置-80℃低温保存或置恒冷冰箱内以备切片;⑵液氮法:将组织块平放于软塑料瓶盖或特制小盒内(直径约2cm),如组织块小可适量加OCT包埋剂浸没组织,然后将特制小盒缓缓平放入盛有液氮的小杯内,当盒底部接触液氮时即开始气化沸腾。

此时小盒保持原位切勿浸入液氮中,大约10-20s组织即迅速冰结成块。

取出组织块后立即置入-80℃冰箱贮存或作恒冷切片。

②将组织置于20%-30%蔗糖溶液中1-3天,利用高渗吸收组织中水分,减少组织含水量。

冰冻切片一般用恒冷切片机。

切片后如不染色,必须将切片吹干,贮存于低温冰箱内,进行短暂预固定干燥后贮存于低温。

【目的】组织标本必须首先被制成组织切片,再经过染色处理,然后才能在显微镜下进行临床诊断和科学研究。

【原理】苏木素染色结合伊红染色是常规组织学染色技术,也称为H & E染色。

苏木素是碱性染色,细胞核被染成深紫或兰色,常用作核染色;伊红是酸性染色,细胞浆染呈红色,常用作胞浆染色。

【材料】1.试剂和溶液(1)2-甲基丁醇(异戊醇)(2)干冰(3)O.C.T.(Tissue-Tek, SAKURA)(4)冰冻或石蜡组织块(5)酸性Harris 苏木素染料(6)1%酸性酒精70%酒精 99 ml浓盐酸 1 ml(7)醇溶性伊红染料(8)酒精(9)二甲苯(10)树脂封片液2.设备(1)塑料模具(2)长镊子(3)Superfrost Plus玻片(Fisher Scientific) (4)盖玻片(5)刀片(一次性或非一次性);(6)冰冻或石蜡切片机(Leica , Micorm 或其它)【方法】方法1、冰冻切片的制备一、准备冰冻组织1. 用塑料或不锈钢容器盛上2-甲基丁醇(异戊醇),然后不时放入小块干冰,使温度降至-40ºC到-50ºC,并保持低温。

2. 标记塑料模具并将O.C.T灌入模具,覆盖其底部。

3. 收集组织标本。

快速,轻柔和准确地取材以保证组织标本的质量,是获得高质量免疫标记染色的最基本条件。

4. 将取下的组织标本置入灌有O.C.T 的模具,用O.C.T 灌满模具,直至标本完全被其覆盖。

组织标本应尽量贴近模具底部,使标本在切片时易于暴露。

酌情调整组织标本的位置。

用长镊子挟住模具,放入冷却了的2-甲基丁醇(异戊醇)溶液中。

为了避免产生空泡,先将模具底部触及溶液,盛有标本的模具从底部开始向表面冷冻,然后将整个模具放入溶液中5-10分钟。

(1)多数取下的组织标本可以直接放入模具。

如标本沾有大量液体,应当用吸水性能好的纸沾去多余的液体,然后冷冻包埋。

不要用溶液清洗标本。

(2)需要先固定处理的组织标本,可以在完成固定后,用10%到30%蔗糖-缓冲液处理,再冷冻包埋。

5. 将冻好的组织标本保存在-80ºC 冰箱以待使用。

二、制作冰冻切片1. 切片前先将冰冻组织标本从-80ºC冰箱里取出,放在冰冻切片机(-20ºC) 内复温。

2. 用O.C.T.将冰冻组织块冻在冰冻标本盘上,然后将其固定在切片机上。

调整好组织块平面与刀片的位置后,开始切片。

直至切到预想的部位后,开始收集切片。

根据研究目的的不同,切片可选择不同的厚度。

3-6 µm是常用的切片厚度,也可以是25-50 µm厚。

3.切片在室温下晾干,然后用理想的固定液固定。

如果选用冷丙酮或丙酮/甲醇,切片在经过20 分钟固定,并在室温下晾干后,可以直接用于染色,或者将其放在密封的切片盒并存入-80ºC冰箱,以待使用。

4. 余下的冰冻组织块,可用O.C.T.覆盖其暴露面,然后存入-80ºC冰箱以待下次使用。

方法2、石蜡切片的制备1.收集组织标本并将其固定。

10%福尔马林缓冲液是最常用固定液,也可根据实验的需要选用其它固定液。

根据标本的大小,将其在室温下固定8-24小时,或更长。

标本的厚度以不超过3 mm 最佳。

完成固定后,标本即可进行下一步的处理。

2.制作石蜡组织块需要专用的设备,以及复杂的组织处理过程。

通常由组织学或病理学实验室完成。

3.石蜡切片。

准备好盛有40ºC蒸馏水的水浴箱,把包有组织的石蜡块固定在石蜡切片机上,根据需要切成一定的厚度(常用4-6 μm),将切片浮在水浴箱的水面上,再转到Superfrost Plus片子上。

切片在室温下自然风干过夜,贮存待用。

冰冻切片(一)冷冻切片的种类冰冻切片的种类较多,有低温恒冷箱冰冻切片法,二氧化碳冰冻切片法,甲醇循环制冷冰冻切片法等。

这些方法,随着时*代的变迁,科技的发展,许多年前被认为是非常重要的技术,现在也逐步被淘汰了。

当然有些技术,如低温恒冷箱冰冻切片法,正在受到青睐。

(二)冷冻切片的目的(1)在手术进行中,突然发现病人的病变与原诊断,原定手术方案不相符合,或者怀疑时,需要病理确定。

(2)了解淋巴结内是否有转移的肿瘤细胞,或者转移的程度,以利于确定是否需要彻底扫除淋巴结或者其它的治疗措施。

(3)对于已确定为恶性肿瘤的患者,则需要了解其手术范围是否足够,上下切缘是否有残存的肿瘤组织。

(4)在做剖腹探查时所发现的肿块或者异样的组织。

(5)显示组织中的脂肪和脂类物质,这常见于某些病例如脂肪瘤及肉瘤,某些科研组织等。

(6)某些酶的显示如ATP酶,琥珀酸脱氢酶等。

(7)神经病理学技术中的某些染色法如:Eager氏法,Marchi氏法,Cajal氏法,Hortega氏法和Holzer氏法等。

(8)对某些物质所进行的免疫荧光的研究。

(三)冷冻切片的制作方法(1)低温恒冷箱冷冻切片制作法1.Shandon As 620 E型恒温箱冷冻切片机的主要性能。

该机的箱面上有电子控制板,装有即时冷冻键和除霜键,启动即时冷冻键,机器马上进行工作状态,并可持续10mins。

启动即时除霜键,可将工作间顶部后面的制冷栅上的霜除掉,并可持续15mins。

有照明键一个,启动该键可照明工作间,有利工作及观察组织的冰冻状况。

配有消毒键一个,当进行一周的工作或者一天的工作后,启动该键,可对工作间进行消毒。

当每天工作完毕时,可启动密锁键,锁住工作间。

除此之外,箱面的左边有四个按键,两个为快速自动进退键,两个为微小进退键,还有一个手动旋钮,调节修组织块时的进退。

冷冻箱内左边的冷冻台,温度可达-60℃左右,冷冻箱的中间为一台切片机,工作间的温度在0-30℃间可任意调节,并在箱面上的荧屏显示出来。

2.操作方法及步骤:①取材,未能固定的组织取材,不能太大太厚,厚者冰冻费时,大者难以切完整,最好为24×24×2mm。

②取出组织支承器,放平摆好组织,周边滴上包埋剂,速放于冷冻台上,冰冻。

小组织的应先取一支承器,滴上包埋剂让其冷冻,形成一个小台后,再放上细小组织,滴上包埋剂。

③将冷冻好的组织块,夹紧于切片机持承器上,启动粗进退键,转动旋钮,将组织修平。

④调好欲切的厚度,根据不同的组织而定,原则上是细胞密集的薄切,纤维多细胞稀的可稍为厚切,一般在5~10um间。

⑤调好防卷板。

制作冰冻切片,关键在于防卷板的调节上,这就要求操作者要细心,准确地将其调较好,调校至适当的位置。

切片时,切出的切片能在第一时间顺利地通过刀防卷板间的通道,平整地躺在持刀器的铁板上。

这时便可掀起防卷板,取一载玻片,将其附贴上即可。

⑥应视不同的组织选择不同的冷冻度。

冷冻箱中冷冻度的高低,主要根据不同的组织而定,不能一概而论。

如:切未经固定的脑组织,肝组织和淋巴结时,冷冻箱中的温度不能调太低,在-10- -15℃左右,切甲状腺、脾、肾、肌肉等组织时,可调在-15~20℃左右,切带脂肪的组织时,应调至-25℃左右,切含大量的脂肪时,应调至-30℃。

3.冰冻切片时的注意事项:①防卷板及切片刀和持刀架上的板块应保持干净,需经常用毛笔挑除切片残余和用柔软的纸张擦。

有时需要每切完一张切片后就用纸擦一次。

因为这个地方是切片通过和附贴的地方,如果有残余的包埋剂粘于刀或板上,将会破坏甚至撕裂切片,便切片不能完整切出。

②多例多块组织同时需做冰冻切片时,可各自放于不同的支承器上,于冷冻台上冻起来,然后依据不同的编号,依序切片,这样做既不费时也不会乱。

③放置组织冰冻前,应视组织的形状及走势来放置,所谓“砍柴看柴势”,切片也是如此,如果胡乱放置,就不能收到很好的效果。

④组织块不须经各种固定液固定,尤其是含水的固定液,在未达到固定前,更不能使用。

临床快速冰冻切片,不须要预先固定,一是为了争取时间,二是固定了的组织,反而增加了切片的难度。

如果使用未完全固定的组织做冰冻切片,就会出现冰晶。

这是因为含水的固定液在组织未经固定前,其中的水份也可渗入到组织中去,当冰冻发生时,这些水份就存留于组织中,形成了冰晶。

⑤当切片时,如果发现冰冻过度时,可将冰冻的组织连同支承器取出来,在室温停留片刻,再行切片,或者用口中哈气,或者用大拇指按压组织块,以此来软化组织,再行切片。

另者,调高冰冻点。

⑥用于附贴切片的载玻片,不能存放于冷冻处,于室温存放即可。

因为当附贴切片时,从室温中取出的载玻片与冷冻箱中的切片有一种温度差,当温度较高的载玻片附贴上温度较低的切片时,由于两种物质间温度的差别,当它们碰撞在一起时,分子彼此间发生转移而产生了一种吸附力,使切片与载玻片牢固地附贴在一起。

如果使用冷藏的载玻片来附贴切片,由于温度相同,没有发生上述的现象。

4.冰冻切片的快速染色法冰冻切片附贴于载玻片后,立即放入恒冷箱中的固定液固定1分钟后即可染色。

以往,为了防止切片脱落,当切片附贴于载玻片后,即用电吹风吹干后再固定。

根据实验对比认为这种做法欠妥未经固定的切片,强热作用后,蛋白发生变性,核内含有的物质由于热的作用融合在一起,染色后镜下分辨不出核内的各种物质。

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