本法自上世纪70年代初期由Van weemen、Schuars及 Perlmarn等相继分别报道后，现已引起广泛重视。
原理
将已知抗体或抗原结合在某种固相载体上，并保持其 免疫活性。测定时将待检标本和酶标抗体或酶标抗原 按不同步骤与固相载体表面吸附的抗体或抗原发生反 应，用洗涤的方法分离抗原抗体复合物和游离物成分 ，然后加入底物显色，进行定性或定量测定。
操作过程
血清
血清加入量 稀释液 抗原
工作量补体
二单位溶血素 2.5%红细胞
判定结果举例
被检血清
0.5
0.5
0
0.5
0.5
0
0.5
0.5
0.5
0.5
0.5
0.5
＋＋＋＋ －
对照管
阳性血清
阴性血清 抗原
0.5
0.5 0.5 0.5 0
0
0.5 0 0.5 0
0.5
0 0.5 0
1
0.5
0.5 0.5 0.5 0.5
牛、马、鹿、骆驼 1:100血清稀释，猪、山 羊、绵羊和狗1:50血清稀释，出现“++”以上凝 集现象时，受检血清判定为阳性。
牛、马、鹿、骆驼 1:50血清稀释，猪、山羊 、绵羊和狗1:25血清稀释，出现“++”以上凝集 现象时，受检血清判定为可疑。 （GB/T 186462002）
补体结合试验
概念
血凝实验步骤
抗原（ul）
注：第12孔为阴性对照。
振荡混匀，于室温（20℃-25 ℃ ）放置40分钟后判定 结果（如果环境温度太高，可置4℃环境下）。对照孔 红细胞将呈明显的纽扣状沉到孔底。
结果判定
将板倾斜，观察红细胞有无成泪滴状流淌。完全血凝 （不流淌）的抗原或病毒最高稀释倍数代表一个血凝 单位（HAU）。
抗原、阳性血清和阴性血清 凝集试验管（三分管）、试管架、吸管及温箱
试管法
置37℃～40 ℃温箱24h，取出检查并记录结果。
试管法
每次试验均应设阳性血清、阴性血清和抗原对照。
牛、马、鹿、骆驼血清稀释法与上述基本一致，差异 是第一管加1.2ml稀释液和0.05ml被检血清。
大规模检疫时也可只用2个稀释度，即牛、马、鹿、 骆驼用1:50和1:100，猪、山羊、绵羊和狗用1:25和1:50 。
四单位抗原配置
根据血凝试验结果配置4HAU抗原。以完全血凝的病 毒最高稀释倍数作为终点，终点稀释倍数除以4即为含 4HAU抗原的稀释倍数。如血凝终点滴度为1：256， 则4HAU抗原的稀释倍数应是1：64（256/4）。
四单位抗原配置
四单位抗原回滴
4单位抗原(µl)
血凝抑制试验步骤
注：第11孔为阳性对照，第12孔为阴性对照。
注射剂量：不论大小牛只，一律皮内注射0.1ml(含2000IU) 。
注射方法：先以75%酒精消毒，然后皮内注射牛型结合分支 菌素PPD，注射后局部应出现小疱，如对注射有疑问，应另 选15cm以外的部位或对侧重做。
皮内注射后72h判定，仔细观察局部有无热痛、肿胀等炎性 反应，并以卡尺测量皮皱厚度，做好详细记录。
酶 酶标记 抗体 抗体
抗原 抗体
抗抗体
1.将抗抗体包被在固相载体上。 2.如样品中含有抗体，则结合 为抗抗体-抗体复合物。 3. 加入抗原及酶标记抗体， 则结合为抗抗体-抗体-抗原酶标记抗体复合物。
4.酶催化底物并显色。
固相载体
捕获法（抗-HAV IgM、抗-HDV IgM等）示意图
应用
疾病临床诊断、疾病监测、疾病普查、法医检查、兽医及 农业上的植物病害的诊断检定等。
37℃～38℃水浴20min
0.5
0.5 0.5 0.5 0.5
0.5
0.5 0.5 0.5 0.5
37℃～38℃水浴20min
＋＋＋＋ － － － －
溶血素 0
1.5 0 0
0.5 0.5
＋＋＋＋
补体 0
1.5 0
0.5
0 0.5
＋＋＋＋
结果判定
第一次判定要求不加抗原的，不加或加抗原的阴性血 清对照管，抗原对照管呈完全溶血反应。
玻片法
判定：
在阴、阳性血清对照成立的条件下，方可对 被检血清进行判定。
受检血清在4min内出现肉眼可见凝集现象者 判为阳性（+），无凝集现象，呈均匀粉红色者 判为阴性（-）。（GB/T 18646-2002）
试管法
材料准备：
稀释液：0.5%石碳酸生理盐水。检验羊血清时 用含0.5%石碳酸的10%盐溶液，如果血清稀释用 含0.5%石碳酸的10%盐溶液，抗原的稀释也用含 0.5%石碳酸的10%盐溶液
内容
血清学检测： 血凝抑制试验 凝集试验 补体结合试验 皮内变态反应 联免疫吸附试验
病原学检测： 聚合酶链式反应
基本概念
抗原：抗原是指那些能够诱导机体的免疫系统发生免 疫应答，产生抗体和致敏效应淋巴细胞，并在体内外 与之特异性结合，发生免疫反应的物质。
抗体：是能与相应的抗原特异性结合的蛋白质分子， 和机体其他生物大分子一样是细胞的产物，分泌到体 液中或表现在细胞表面上。
实验准备
稀释液：0.85%生理盐水 绵羊红细胞悬液：采成年公绵羊血，用稀释液洗涤3-4
次，最后一次以2000r/min离心10min，以稀释液配置 成2.5%红细胞悬液 抗原、标准阳性血清、阴性血清、溶血素 受检血清：用稀释液作1:10稀释，加热灭能 溶血素 补体 抗原
直接凝集试验
颗粒性抗原与凝集素直接结合并出现凝集现象的试验 称作直接凝集试验（direct agglutination test）。
直接凝集试验按操作方法可分为玻片法和试管法。
玻片法
玻片法为定性试验。 此法简便快速，可用已知诊断抗原悬液检测待检血清
是否存在相应抗体。
玻片法
试验准备：
试验原理（续）
血凝抑制试验可以用于：①应用标准病毒悬液测定血 清中的相应抗体；②应用特异性抗体鉴定新分离的病 毒。
测定动物血清中的血凝抑制抗体，必须首先：①滴定 病毒或其血凝素对相应红细胞的血凝效价；②应用某 种或某几种方法处理被检血清，除去其中的非特异性 血凝抑制物质。
实验准备
血凝板 0.5%-1%的红细胞悬液 100ul微量移液器 PBS或生理盐水 待检病毒液或检测抗原 待检血清及阳性血清
凝集实验
概述
细菌、红细胞等颗粒性抗原，或吸附在胶乳、白陶土 、离子交换树脂和红细胞的抗原，与相应抗体结合， 在有适当电解质存在下，经过一定时间，形成肉眼可 见的凝集团块，称为凝集试验（agglutination）。
凝集试验可用于检测抗原或抗体应的方式分为直接凝 集试验（简称凝集试验）和间接凝集试验。
抗原、抗体反应：抗原和抗体在体外的反应亦称血清 学反应。
血凝及血凝抑制试验
试验原理
某些病毒或病毒的血凝素，能选择性的使某种或某几 种动物的红细胞发生凝集，这种凝集红细胞的现象称 为血凝（hemagglutination，HA），也称直接血凝反 应。
当病毒的悬液中先加入特异性抗体，且这种抗体的量 足以抑制病毒颗粒或其血凝素时，则红细胞表面的受 体就不能与病毒颗粒或其血凝素直接接触。这时红细 胞的凝集现象就被抑制，称为红细胞凝集抑制 （hemagglutination ingibition，HI）反应，也称血凝 抑制反应。
ELISA可用于检测抗体，也可用于检测抗原。
实验的方法类型有多种，如双抗体夹心法、间接法、 竞争法和捕获法等，虽然原理不尽相同，但实验特点 和影响因素基本一样。
酶
抗抗 体
酶标记 抗抗体
抗体
1.将抗原包被在固相载体上。
2.如样品中含有抗体，则结合 为抗原抗体复合物。 3.再加入酶标记抗抗体，则结 合 为抗原-抗体-酶标记抗抗体复 合物。
抗原、标准阳性血清、阴性血清 受检血清应新鲜，无明显蛋白凝块，无溶血、 无腐败气味 洁净的玻璃板，其上划分成4cm2的方格 吸管或分装器，适于滴加0.03mL 牙签或火柴杆，供搅拌用
玻片法
操作方法：
将玻璃板上各格标记受检血清号，然后加相 应血清0.03ml
在受检血清旁滴加抗原0.03ml 用牙签类小棒搅动血清和抗原使之混合 每次试验应设阴、阳性血清对照
轻轻混匀，静置约40分钟。
结果判定
以完全抑制4个HAU抗原的血清最高稀释倍数作为HI 滴度。
只有阴性对照孔血清滴度不大于2log2，阳性对照孔血 清误差不超过1个滴度，实验结果才有效。
HI价小于等于3log2判定HI试验阴性；HI价等于4log2 为可疑，需重复试验；HI价大于等于5log2为阳性。 （GB/T 18936-2003）
4.酶催化底物并显色。
抗原
固相载体
间接法（抗-HCV等）示意图
酶 酶标记抗体
抗体 抗原
1.将抗体包被在固相载体上。 2.如样品中含有抗原，则结合 为抗原抗体复合物。 3.再加入酶标记抗体，则结合 为抗体-抗原-酶标记抗体复合 物。
4.酶催化底物并显色。
抗体
固相载体
双抗体夹心法（HBsAg、HBeAg等）示意图
检，其结果仍为疑似反应时，经60d再复检，如仍为疑 似反应，应判为阳性。（GB/T 18645-2002）
酶联免疫吸附试验（ELISA）
概述
酶具有高效生物催化作用，一个酶分子在数分钟内可以 催化几十、几百个底物分子发生反应，产生放大作用， 使得原来极其微乎其微的抗原或抗体在数分钟后就可被 识别出来，这种技术被称为酶联免疫吸附试验法 （Enzyme-Linked Immunosorbent Assay，ELISA）。
试管法
结果判定