使用excel对试验对象完全随机分组的操作步骤如下:
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1.在单元格A1、B1、C1中分别键入编号、随机号、分组号， 随后在A2、A3中分别键入 1、 2，然后拖动鼠标利用 excel 的自动填充功能完成1～30的编号。
2.在B2单元格键入“=RAND() ”后回车产生一个随机数
对象：大、小鼠等。
特点：中等血量（0.2～0.3ml，小鼠；0.5～1.0ml，大白 鼠），避免动物死亡。
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3
断头采血
方法：左手以拇指和食指保持动物的头颈部，使
其头略下倾，右手持剪刀猛力剪断鼠颈，让血液
滴入盛器。
对象：大、小鼠等。
特点：需要血量较大（小白鼠可采血0.8～1.0ml，
右手将开口器 从一侧口角插 入口腔并固定。
胃管经开口器 的孔插入，向 前推进约15cm， 可达胃内。
在插管时应将 胃管另一端泡 在水中确认没 有冒气泡，即 可用注射器经 胃管注入药 液。
豚鼠灌胃同 家兔
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•皮下注射给药——大小鼠
颈背部、腋下、 腹侧和后肢的皮 下
实验动物的捉 拿.MPG
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•灌胃给药——大小鼠
剂量：小鼠约0.1-0.5ml／10g体重。最大体积为1.0ml/只 大鼠约1-2 ml／100g体重，最大体积为1.0ml/只
用右手食指将 针栓慢慢往下 压，将注射器 中的药液灌入 动物的胃中。
左手捉持动物， 使头部向上。
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•大鼠的捉持
以左手拇指和 食指捏住大鼠 两耳后部的头 颈皮肤，其余 三指和手掌握 住大鼠背部皮 肤，完成抓取 固定。
首先戴好防护 手套
用右手拇指和 食指抓住大鼠 尾巴中部将大 鼠提起，放在 大鼠饲养盒的 面罩上。
左手顺势按、 卡在大鼠躯干 背部，稍加压 力向头颈部滑 行。
药理学动物实验基本方法
药学院药理学科组
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Contents
1 2 3 4
实验动物的捉持与给药 实验动物的采血 实验动物的编号和分组 实验动物的麻醉
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小鼠
大鼠
一、捉持与给 药
豚鼠
家兔
犬
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回抽注射器针 栓，如有回血， 则证明针尖在 血管内，即可 推注药液。
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•静脉注射给药——兔
兔放在固定架内， 酒精消毒并揉搓 血管，使兔的耳 缘静脉充盈。
用左手食指和中 指夹住兔的耳缘 静脉的近端，拇 指绷紧静脉的远 端，无名指和小 指放在耳郭下作 垫。
字，然后同样利用其自动填充功能在 B2～B31生成一列随
机数。需注意的是这里产生的随机数是会随着单元格的操 作而变化的。故需选中“B2”至“B31”单元格区域,复制
所选中的区域,并以数据格式进行选择性粘贴。
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3.选中A 列、B 列,单击菜单栏“数据”→“排序”,在弹出的对话框中,选择以‘’随机数”为排 序的“主要关键字”,按“确定”按扭,则按B 列随机数字的大小完成A 列、B 列的排序。 4.分别在C2～C11、C12～C21 和C22～C31 单元格中,依次键入“1”、“2”、“3”;用鼠标同时
注射时，以左 手拇指和中指 捏住鼠尾两侧， 用食指从下面 托起尾，
右手持4号针 头的注射器， 使针头与 静脉平行 （小于30度角）
大鼠亦可用 舌下静脉注 射
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•静脉注射给药——犬
先将注射部位毛 剪去 。
前肢皮下头静脉 或后肢小隐静脉 注射 。
在静脉血管的 近心端，用乳 胶管扎紧肢体， 使血管充盈， 注射器针头向 静脉血管的近 心端方向穿刺 。
1、将灌胃针连 接在注射器上， 吸入一定量的 药液。
右手持针，把 灌胃针头的前 端放进动物的 口腔，顺着上 腭部插入咽部， 顺咽后壁轻轻 往下推。
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•灌胃给药——兔
将兔放进固 定架 内，灌胃者用左 手拇指和中指挤 压兔两颊，将下 颌挤开使兔被动 张口。
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•豚鼠的捉持
先用左手轻轻 扣、按住豚鼠 背部。
顺势抓紧其肩 胛上方皮肤， 拇指和食指环 箍其颈部。
用右手轻轻托 住其臀部， 即可将豚鼠抓 取固定。
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•兔的捉持
用左手托住兔 的臀部
家兔的固定方 式有腹卧式和 仰卧式两种

2
眼眶静脉丛采血
方法：用左手捉鼠，拇指及中指抓住头颈部皮肤，食指按
于眼后，使眼球轻度突出，眼底球后静脉丛淤血。右手持
取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管（临用前折断成1-1.5cm长的毛细管 段，浸入1％肝素溶液中，干燥后用）刺入深度小鼠2～3mm，大
鼠4～5mm。当感到有阻力时再稍后退，得到所需要的血量 后，拔出。
三、实验动物编号与分组
（二）分组： 1、组别的要求： 正常对照组 模型组 阳性药组 药物不同剂量组
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（1）正常对照组 ① 要求 不加任何处理，指在正常条件下进行观察和对照，给药组如是灌
胃给药，对照组应用灌胃溶剂。 ② 目的 对比观察模型是否成功；观察被试药能否使病理改变恢复正常。
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6
静脉采血
方法：将家兔放在固定箱内，剪去拟采血耳壳上的毛，用电灯照射
加热或用二甲苯棉球涂擦耳壳，使耳部血管扩张。用粗针头刺破耳缘
静脉或以刀片在血管上切一小口，让血液自然流出，滴入已放有抗凝 剂的盛器中。采血完毕，用干棉球压住出血口，以待止血。如一时不
5
心脏采血
方法：将动物背位固定，在左胸第2至第4肋间剪毛一块，用碘酒和
酒精消毒。然后用配有7号针头的10ml注射器，在心跳最明显处作穿
刺。针头刺入心脏后即见血液流入注射器；或边刺边抽，直至血液流 入注射器。取得所需血量后，迅速将针头拔出，这样心肌上的穿刺孔
较易闭合。
对象：兔、豚鼠等。
特点：采血量较大，继续保存动物生命。
(5)尾巴根为10号。
（6）额部为20号
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2、双色涂染法： 在每组动物不超过100只的情况下用。
实验动物：大鼠、小鼠。
常用染色剂：
(1)3-5％苦味酸溶液，可染成黄色。
——作为“个”位数。
(2) 0.5%中性红或品红溶液，可染
成红色。——作为“十”位数。
选中A、B、C 列,单击菜单栏“数据”→“排序”命令,在弹出的“排序”对话框中,选择以“编号”
为排序的“主要关键字”,这样就可以得到各个实验对象的分组编号。（见表1）
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随机区组分组
随机区组分组是按照一定条件，将几个条件相同的试验对象分为一个区组，然后在每个区组内
注射针头取一 锐角角度刺入 皮下。
将针头轻轻向 左右 摆动，易 摆动则表示已 刺入皮下。
再轻轻抽吸， 如无回血， 可缓慢地将 药物注入皮下
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•静脉注射给药——大小鼠
将大小鼠放在金 属笼或小鼠固定 器 中，通过金属 笼或大小鼠固定 器的孔拉出鼠尾 巴
用左手捏住鼠 尾巴中下部， 用75％ 酒精棉球反 复擦拭尾部
小剂量差以2～3的等比级数为宜；
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（二）分组的方法
完全随机分组时将试验对象完全按随机原则分组。它的设计、
完全随机分组
分组、和统计处理都比较简单，但试验效率较低。 例：将30只SD 大鼠随机分配到甲、乙、丙3组。
（2）阳性药对照组 ① 要求 所选药必须是药典所有的或国家批准的药，如用西药，则采用公
认的，疗效可靠的。
② 目的 说明所用方法的可靠性；对比新药的优劣和特点。
（3）模型对照组 ① 要求 ② 目的 除不用药外，其他处理同给药组，模型要符合中医证或病的模型。 对比观察受试药的药理作用。
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大白鼠可采血5.0～8.0ml） ，且不需要继续保存
动物生命时用本法。
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对象：大、小鼠等。
腹主动脉采血
方法：动物要麻醉后进行，用针管在腹主动脉分
特点：需要血量较大，且不需要继续保存动物生
命时用本法。
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右手拿注射器， 针尖的斜面朝 上，将针 头从远心端插 入血管
回抽有血即可 注射，拔针后 用棉球止血
豚鼠可用足 背静脉注射
实验动物的 给药.MPG
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二、实验动物的采血
尾尖采血 眼眶静脉丛采血 断头采血 腹主动脉采血 心脏采血 静脉采血
腹主动脉采血
1 2 3 4 5 6
（4）药物组
■一般应设三个剂量组，大动物，操作特殊困难者可设两
个剂量组；
■能够测出LD50的受试药物，动物试验给药剂量一般为
1/10～1/5 LD50；
■很多中药制剂毒性甚小，无法测出LD50者，一般常用人
用剂量（g或mg生药/kg体重）来折算动物用量；
■正式实验时常以等效剂量作为中剂量或小剂量，大、中、
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尾尖采血
方法：固定动物并露出鼠尾，将尾部在45℃的温水中 浸泡数分钟（或以二甲苯棉球涂擦），使尾部血管扩
张。将鼠尾擦干，用锐器切去尾尖0.3～0.5cm，让血
液滴入盛器或直接以血红蛋白吸管吸取。
对象：大、小鼠
特点：小量采血，可以多次采血。
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部按随机化原则，将每个对象分配到各组。
例：将SD大鼠32只，体重180g～220g,按体重大小配成8 个单位组,每个单位组中的4 只大鼠随 机分配接受A、B、C、D 4 种处理,试给出随机化分组的结果
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3、穿耳孔法 用专用耳空器在动物耳朵不同部位打一小孔或缺
口表示一定号码的方法，原则是：左耳代表十位，右耳代
表个位。实验动物：兔、犬、猪 4、标牌法 一般挂在动物的颈部、耳朵、脚上或 实验动物：犬、猴 5、烙印法 6、剪毛法