图 小鼠保定
大鼠的抓取与固定
✓ 抓取方法 ✓ 固定方法:
徒手固定;固定板固定;卵圆钳固定
•豚鼠的抓取与固定
✓抓取方法 ✓固定方法
徒手固定 固定板固定
图 豚鼠抓取和保定
•家兔的抓取与固定
✓抓取方法 ✓固定方法
徒手固定;盒式固定;台式固定
图 兔抓取和保定
•犬的抓取与固定
✓抓取方法 ✓固定方法
慢性试验中犬的固定方法 急性试验中犬的固定方法:头部的固定;四肢固
定
图 狗嘴捆绑保定的方法
• 猪的抓取与固定
✓ 抓取方法 ✓固定方法
猴的抓取和固定
✓ 抓取方法 ✓固定方法
五.动物的编号、标记及去毛方法
• 动物的编号与标记： ✓常用的标记液：
①3%~5%苦味酸溶液（黄色） ②0.5%中性红或碱性品红溶液（红色） ③2%硝酸银溶液（咖啡色，涂后需光照10分钟） ④煤焦油酒精溶液（黑色）
②麻醉时要注意保温。保温方法有：实验桌内 装灯，电褥，台灯照射等
③作慢性实验时，在寒冷季节，麻醉剂在注射 前应加热至动物体温水平。
④注意保持动物的呼吸道的通畅，麻醉前禁食.
八.动物的给药途径和方法
实验动物的给药方法主要分为注射法和 投入法两种，注射法又分为：皮下注射、肌 肉注射、腹腔注射、脑膜下注射、脑内注射、 胸腔内注射、腰椎内注射、静脉注射、关节 腔注射和心内注射等方法，投入法可分为： 鼻腔内投入、胃腔内投入、肠管内投入、气 管内投入以及经口腔投入。
图 兔的灌胃
图 兔的耳静脉注射
物与环境的相互作用 实验者带来的差异 ✓ 实验过程的实施： ✓不准确的测量
动物固有的差异
✓ 动物来源不一 ✓ 饲养管理的差别 ✓ 动物生活环境不同 ✓ 动物健康状况
动物与环境相互作用引起的差异 ✓ 群居因素，每个笼盒饲养动物数量 ✓ 动物与实验操作过程之间的相互作用引起 ✓ 饲养操作与实验操作的顺序 ✓ 实验操作引发的动物之间的影响
✓肌肉注射：大腿外侧肌肉 ✓腹腔注射 ✓静脉注射： ➢ 耳缘静脉 ➢外侧跖静脉
•兔的给药途径和方法
✓灌胃：确保灌胃管插入胃内；药液推完后 将残留在灌胃管内的药物用水冲入胃内，ห้องสมุดไป่ตู้确保给药剂量的准确
✓皮内注射：背部脊柱两侧的皮肤 ✓皮下注射：背部和腿部皮肤 ✓肌肉注射 ✓腹腔注射 ✓静脉注射：耳缘静脉
三.实验动物的领取
✓ 明确实验所用动物的品种、品系、规格、等级、 以及实验的大致时间表
✓ 填写动物申领计划表，教研室主任签字生效 ✓ 填写动物领用表,确定所领动物的品种、品系、规
格、数量
四.实验动物的抓取和固定
小鼠的抓取和固定 ✓ 抓取方法
图6—1 小鼠抓取
固定方法:
徒手固定;固定板固定;固定架固定;简易固 定
第六章 动物实验的基本技术方法
一.动物实验前的准备
➢ 动物实验前的理论准备: 实验动物方面的基础知识;选题 ;方案的制订;方法
的选定
➢ 动物实验前的条件准备:
实验仪器、药品、试剂、实验动物
➢ 预备实验
二 动物实验的设计与分组
1.设计原则：
➢ 对照性原则：
设对照组，应有可比性，分为自体对照和组间对 照
七. 动物的麻醉方法
✓常用的麻醉剂 1. 挥发性麻醉剂:乙醚、氯仿等 2. 非挥发性麻醉剂：苯巴比妥钠、戊巴比 妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物，盐 酸氯胺酮、水合氯醛等 3.中药麻醉剂：洋金花、东莨菪碱等
其他麻醉辅助用试剂：
• 镇痛剂：芬太尼、埃托菲等 • 镇静剂：氟阿尼酮、乙酚丙嗪等 • 抗胆碱药：阿托品、格隆溴铵等 • 肌松剂：筒箭毒碱、泮库溴铵等 • 其它：α-2激动剂——美托咪定，对狗、
➢ 一致性原则：
对照组和试验组除处理因素外，其他因素保持一致
➢ 重复性原则
同一处理要设多个样本例数，为估计试验误 差、降低试验误差、增强代表性，提高实验结果 的精确度
➢ 随机性原则：
随机分组
➢ 客观性原则
实验设计、选择观察指标以及结果判断要客观
2.差异的控制： 差异的来源：⑴实验者；⑵动物；⑶动
猫、兔及大多数啮齿类动物可产生良好 的镇静和镇痛效果
✓动物的麻醉方法 1．全身麻醉
①吸入法: ②腹腔和静脉给药麻醉法 2.局部麻醉:盐酸普鲁卡因、盐酸可卡因、利 多卡因
✓ 麻醉注意事项: ①静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张性、
角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显 减弱或消失时，停止注射。
✓ 腹腔注射：用左手的大拇指、食指和中指 从大鼠的前肢和头部后面抓住大鼠，同时 用身体抵住大鼠的两后肢使之固定，使腹 部向上并伸展，注射方法与小鼠相同。
✓静脉注射：尾静脉
•豚鼠的给药途径和方法
✓经口给药： ➢固体药物的投入 ➢液体药物的投入 ✓皮下注射：大腿内侧面、背部、肩部等皮
下脂肪少的部位 ✓皮内注射：脊柱两侧
•小鼠的给药途径和方法
✓灌胃（i.g）:动物要固定好；头颈部保持平展；
要沿着口角进针，再顺着食管方向插入胃内；决 不可进针不顺就硬向里插。
✓皮下注射（s.c）:常选用颈背部皮肤。
图 大小鼠的灌胃
✓皮内注射（i.d）:观察皮肤血管的通透性变化及
观察皮内反应，多用于接种、致敏实验等。雄性 较雌性皮肤紧密，注射难度大。 ✓ 肌肉注射（i.m）：较少应用 ✓ 腹腔注射（i.p）: ✓ 静脉注射（i.v）：一般采用尾静脉注射。小鼠尾 部背腹各有一根动脉，两侧各有一根静脉。
图 个体染色标记法
✓编号原则： 先左后右，从前到后。左前肢记为1号，
左侧腹部为2号，左后肢3号，头顶部为4号， 腰背部5号，尾基部6号，右前肢7号，右侧 腹部8号，右后肢9号。编号超过10时，可 使用两种不同颜色的溶液，把一种颜色作 为个位数，另一种为十位数。
六. 实验动物被毛的去除方法
1. 剪毛法 2. 拔毛法 3. 剃毛法 4. 脱毛法 常用的化学药品：硫化钡（BaS）、硫化钠 （NaS）、硫化钙（CaS）
图 小鼠腹腔注射
图 小鼠尾静脉注射
•大鼠的给药途径和方法
✓ 灌胃:左手按徒手固定方式固定大鼠,使大鼠伸开两 前肢,手掌握住大鼠背。方法与小鼠相同。
✓ 皮下注射：常选在左侧下腹部或后腿皮肤处，方 法同小鼠。
✓ 皮内注射：常选用背部脊柱两侧的皮肤，方法同 小鼠。
✓肌肉注射：一般选择股二头肌注射，但应 避免伤及坐骨神经，否则会导致后肢瘫痪