2020/8/19
下呼吸道标本
Lower Respiratory Tract Specimen
自然咳痰 诱导痰 肺部组织
支气管肺泡灌洗液 气管内吸取物
2020/8/19
下呼吸道标本（痰培养）
Lower Respiratory Tract Specimen
• 标本的采集：一般检查应采集清晨第一口 痰，患者晨起用清水漱口3次，然后用力 咳出气管深处痰液。
2020/8/19
谢谢!
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环节六
对每个环节进行控制，构成质量保证体系
失误的不同分布
分析前阶段约占总失误的55%，分析阶段
约占总失误的4%，分析后阶段约占总失误
的41%。
分析后阶段
分析前阶段
41%
55%
4%
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分析阶段
标本采集及送检
• 血培养 • 呼吸道标本 (痰标本、咽部标本） • 尿培养 • 抽吸物和组织标本的培养 • 无菌体液
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下呼吸道标本
Lower Respiratory Tract Specimen
下呼吸道分泌物(痰)的细菌学检查对病原学 诊断起着重要作用 ,但目前亦存在着严重的
问题 ———标本的质量问题 ,因此 ,往往造成 作出的病原学诊断和实际引起感染的病原菌 脱节 ,以致造成抗菌药物的应用不合理甚至 耐药菌的出现或流行
临床微生物标本采集
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临床微生物检验流程示意
分 析 前
门诊 病房 诊所
不合格
临床标本
留取
运送
SOP +
环节一
环节二
SOP
IQ
合格
标本合格？ 环节三
标本合格
判定
实验室 分 析 中 分 析
后 2020/19
接
直接检测EQA标本
种培
养
检 测
报告
环节四
培养基、冰箱 温箱、气体
环节五 仪器设备、试剂
粘液丝
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胞内细菌 ——提示感 染
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细胞内细菌
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尿道感染
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用于尿液培养的标本
•耻骨上膀胱抽吸物
•中段尿，清洁留取
•留置导尿管中采集的标本（经常被
三种
以上细菌污染）
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中段尿培养标本
先用水和中性肥皂清洁外阴部→弃前段尿液 →小心收集中段尿液20-30ml →盖上盖子送 检 •注意事项
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血培养标本
• 采血时机
最好在抗菌治疗前 ,以正在发冷发热时 或 发冷发热前半小时为宜。
• 采血部位
应从身体不同部位采血（双侧双瓶） ，以排除皮肤菌丛污染的可能；要避免 从动静脉导管内取血；用来培养的血应 该是静脉血
2020/8/19
血培养标本
• 方法 先以肥皂清洗皮肤污垢→穿刺静脉皮肤 、 血培养瓶口及抽血者手指的消毒（ 70%酒精→2%碘酒1~2min →70%酒 精）
•标本应盛于清洁有盖容器（专用）内立即 送检，力求新鲜，以免细胞和细菌自溶
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标本质量
脓痰
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唾液or诱导痰 (?)
粘液样痰 带血痰
用革兰氏染色来评估 呼吸道标本是否合格
2020/8/19
痰标本>10鳞状上皮细胞/每低倍视野 =拒收
2020/8/19
有PMN的痰标本，中性粒细胞多，且鳞状上皮细 胞特别少=接受，进行培养
• 标本量 成人抽取5～8ml 婴幼儿或儿童抽取1～4ml
标本送检 2020/8/若19 不能离立即送至实验室，应置于35℃
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上呼吸道标本
Upper Respiratory Tract Specimens
2020/8/19
下呼吸道标本 Lower Respiratory Tract Specimens
➢ 尿液在膀胱内应停留 6～8h以
上 ,使细菌有足够时间繁殖
➢ 不可打开导尿管和引流管连接处 收集标本 ,培养用的尿液标本也 不 能从引流袋中留取
➢ 及时送检（2h内），否则易致假 阳性结果 2020/8/19
2020/8/19
标本采样和送检
• 临床常常送检脓液和渗出液的拭子给 实验室做检查。
• 尽可能抽吸或将拭子深入伤口，无菌 盐水或70%乙醇擦去表面渗出物，用 拭子深入溃疡基地部或边缘部，采集 两个拭子分别做培养和革兰氏染色
2020/8/19
无菌体液
•脑脊液、腹水、胸水、滑膜液、羊 水、胆汁等培养标本
•这些均有临床医生采样，采样后根 据标本外观选择培养。明显炎性的 标本可直接注入无菌容器中送检， 清或轻度混浊的标本可按血培养方 法操作。
2020/8/19
重视分析前的质量管理，确保病人标本 的检测质量这是至关重要的一个环节 ，对于不合格的标本,采用现代化的检 测系统也无法获得可靠的结果。保证 检验结果的准确性不仅仅是检验科的 责任，临床及病人的配合也是至关重 要的，检验科的检验质量离不开临床 的帮助。