1.44
4.40
7.70
9.70
13.30 17.20 20.00
1.44
4.40
7.70
9.70
12.10 15.20 17.80
7周
39.90
8周
40.05
34.07 34.80
18.65 20.25
16.10 18.16
21.60 22.40
19.00 20.25
27.96 28.83
23.12 24.16
可采0.2-0.3ml，大鼠可采血约0.5ml。如只进行一次
取血，可采用摘眼球法。
34
小鼠眼眶后静脉丛取血方法
35
6-血样的采集
（3）股动脉采血：大量取血时常用此法。需手术分 离股动脉。小鼠的一次采血量可达0.5ml，大鼠可达 2.0ml。 （4）断头采血 （5）心脏采血
36
犬股动脉取血方法
37
1.40
3.35
5.50
7.32
11.60 14.75 15.60
1.44
3.50
5.60
6.90
12.57 18.10 20.50
1.40
3.42
5.55
6.40
12.20 16.90 18.40
1.58
4.64
7.96
9.83
19.00 22.58 25.96
1.58
4.64
7.96
9.83
15.75 20.75 21.88
引自：国家啮齿类实验动物种子中心—上海分中心
17
1 眼皮张开 2 能跳跃 3 能抓东西
引自：国家啮齿类实验动物种子中心—上海分中心
18
1 自行采食
引自：国家啮齿类实验动物种子中心—上海分中心
19
1 离乳 2 能独立生活
引自：国家啮齿类实验动物种子中心—上海分中心
20
品系 昆明 ♂
♀
Bc ALB/ ♂
24
5-分组与编号
5-1、分组
进行动物实验时，通常采用随机分组的方法。
25
5-分组与编号
5-2、编号
5-2-1 颜料标记
颜料标记适应于较大量小动物的编号。常用的颜料有 5%苦味酸溶液 (黄色)、2%硝酸银溶液 (咖啡色)、0.5% 中性品红溶液 (红色)、煤焦油的酒精溶液(黑色)。颜料号 的原则是先左后右，从上而下。
♀
C/657BL ♂
♀
615 ♂
♀
C3H ♂
♀
不同日龄小鼠体重情况（单位：克）
初生 1周 2周
2.01
5.82
8.35
3周
14.80
4周
22.60
5周
33.25
6周
39.25
1.95
5.54
7.90
13.55 21.35 27.90 32.80
1.46
3.50
5.60
7.40
12.45 16.10 17.40
鼠 ：0.3—0.8ml
7-1-1 吸入法
乙醚、氯仿等挥发性麻醉剂用吸入法麻醉，适用于各种实 验动物。大鼠、小鼠可将头部放入蘸有乙醚棉球的广口瓶 或干燥器内，4—6分钟后即处于麻醉状态。如实验过程较 长，可在其鼻部放棉花或纱布，不时滴加乙醚维持，也可 用乙醚先麻醉后再用非挥发性麻醉剂维持麻醉。
在给药过程中，如果发现动物的角膜反射消失，瞳 孔突然放大，应立即停止麻醉。如果呼吸停止，可进 行人工呼吸，并配以咖啡因、可拉明等苏醒剂，待恢 复自主呼吸后再进行实验。因乙醚易引起上呼吸道分 泌物增多，导致窒息，可先注射阿托品预防。
13
1 皮肤变厚 2 黑色绒毛 3 两耳张开 4 能翻身
引自：国家啮齿类实验动物种子中心—上海分中心
14
1 绒毛 2 下门齿长出 3 能爬动
引自：国家啮齿类实验动物种子中心—上海分中心
15
1 被毛长全 2 有听觉 3 能站立
引自：国家啮齿类实验动物种子中心—上海分中心
16
1 开眼 2 门齿长出 3 爬行
大鼠的门齿很长。实验者应戴上棉纱 手套，右手轻轻抓住大鼠的尾巴向后拉 ，但要避免抓其尖端，以防尾巴尖端皮 肤脱落，左手抓紧鼠两耳和头颈部的皮 肤，并将大鼠固定在左手中，右手即可 进行操作。
1-3、豚鼠的抓取与固定
豚鼠胆小易惊，性情温和，不咬人，抓取幼小 豚鼠时，只需用双手捧起来，对体型较大或怀孕的 豚鼠，先用手掌迅速扣住鼠背，抓住其肩胛上方， 以拇指和食指环握颈部，另一只手托住其臀部
或用酒精棉球涂擦鼠尾,使尾部血管充盈,剪去尾尖1— 2mm(小鼠)或3—5mm(大鼠),使血液顺血管壁自由流 入试管或用血红蛋白吸管吸取。采血结束时,伤口消毒 并压迫止血。此法每只鼠一般可采血10次以上，小鼠 每次可取血0.1ml左右，大鼠可取血0.3—0.5ml。
32
大鼠尾静脉取血方法
33
6-血样的采集
7-2 局部麻醉
1%盐酸普鲁卡因，局部注射 2%盐酸可卡因，粘膜表面麻醉
局部麻醉方法很多，有表面麻醉，浸润麻醉和阻断 麻醉等，使用最多的是浸润麻醉。浸润麻醉是将药物 注射于皮内、皮下组织或手术野深部组织，以阻断用 药局部的神经传导，使痛觉消失。常用的浸润麻醉药 是1%盐酸普鲁卡因，此药安全有效、吸收快、显效 快，但失效也快。
27
5-分组与编号
5-2-4 号牌 将不锈钢或铝质号牌固定在狗或猴的链条或颈
圈上。兔号牌则固定在耳朵上。少量动物时也可 将号牌挂在笼具上，但应防止抓取操作后将动物 放错笼具而混淆编号。
28
5-分组与编号
5-2-5 毛色 利用动物的毛色将其编号，用于少量的狗、马
、猫、猴等大动物的编号。 5-2-6 剪毛
26
5-分组与编号
5-2-2 烙印 用号码烙印钳在兔、豚鼠的耳朵烙号，然后在烙印
部位涂上溶在酒精中的黑墨或煤粉。猪等大动物也可 用此法在臀部皮肤烙号标记。也有将实验分组编号烙 在狗脖套的皮带颈圈上。 5-2-3 纹身
用刺数钳在局部皮肤(兔多在耳朵内侧，猴多在前胸 皮肤)刺上号码，再用棉签蘸上墨汁酒精涂沫刺号，多 用于猴、兔的编号。
43
7-麻醉
目的：防止动物挣扎，保持安静 防止意外损伤，便于操作
7-1、全身麻醉
1%硫喷妥钠:15mg/kg，iv/ip 2%戊巴比妥:40mg/kg，iv/ip 盐酸氯胺酮:40mg/kg，sc/im 复方氯胺酮:0.01ml/kg，sc/im
速眠新(846)注射液
每Kg体重: 杂种犬：0.1---0.15ml 纯种犬：0.04—0.08ml 猫、兔：0.2—0.3ml 羊、猴：0.1—0.15ml
小白鼠灌胃方法
大白鼠灌胃方法
8-实验动物的给药途径和方法
（2）兔、犬等： 灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。先将动物
固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃 管（常用导尿管代潜）从开口器的小孔插入动物口中 ，沿咽后壁而进入食道。插入后应检查灌胃管是否确 实插入食道。可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中， 若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入 气管。
小心细致、大胆敏捷，切忌粗暴。
1-实验动物的抓取与固定
1-1、小鼠
用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面 上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其 双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指 夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。
1-实验动物的抓取与固定
1-2、大鼠的抓取与固定
兔灌胃方法
8-实验动物的给药途径和方法
动物种类 小白鼠
灌胃针深度 3cm
大白鼠、豚鼠 5cm
兔
15cm
每次灌胃量 1ml 1-4ml 80-100ml
犬
约20cm
200-250ml
8-实验动物的给药途径和方法
（二）注射给药法
注射给药剂量准确、作用快，是动物实验中常用 的给药方法，给药时应注意针头的选择（鼠类用 4#针头，兔、猫、犬、猪、猴用6—8#针头）。
10
3-年龄的大致判断
年龄的大致判断： 3-1、根据形态：
牙齿、趾爪、被毛、神态等。
3-2、根据体重：
体重与年龄呈现相关。
11
1 皮肤肉红 2 全身无毛 3 不开眼 4 双耳粘连
引自：国家啮齿类实验动物种子中心—上海分中心
12
1 皮肤红色，颜色变淡 2双耳粘连
引自：国家啮齿类实验动物种子中心—上海分中心
用剪刀在狗背上剪出号码，此方法简单，字迹 清楚、可靠，便于观察。 5-2-7 打孔
用打孔器在兔耳上打孔或剪口。
29
小鼠和大鼠标号示图
30
6-血样的采集
根据不同的实验要求及不同种类的实验动 物而采取不同的采血方法。如：
心脏、胸主动脉、股动脉、静脉、剪(割、 刺)尾、眼眶、断头
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6-血样的采集
（1）剪尾采血：需血量较少时常用此法。 先将动物固定，将鼠尾浸在45℃左右温水中几分钟
动物实验基本操作技术
1
主要讲授内容
1 - 抓取固定 2 - 性别鉴定 3 - 年龄判断 4 - 妊娠检查 5 - 分组编号 6 - 常规采血 7 - 麻醉方法 8 - 给药途径 9 - 处死方法
2
1-实验动物的抓取与固定
目的：限制动物的活动，持安静状态 以便正确操作和记录
要求：不损伤实验动物 不影响观察指标 实验者不被动物咬伤 保证实验顺利进行
8-实验动物的给药途径和方法
8-1、灌胃法 是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种
常用给药方法，此法给药剂量准确。但是每天 强制性操作和定时给药会给动物造成一定程度 的机械性损伤和心理上的影响。因此必须充分 掌握灌胃技术。
8-实验动物的给药途径和方法