植物生理学实验指导主编胡君艳陈国娟张汝民浙江农林大学植物学科2013年8月实验一植物组织水势的测定水势与渗透势的测定方法可分为3大类：⑴液相平衡法，包括小液流法、重量法测水势，质壁分离法测渗透势；⑵压力平衡法（压力室法测水势）；⑶气相平衡法，包括热电偶湿度计法、露点法等。

Ⅰ小液流法【实验目的】了解采用小液流法测定植物组织水势的方法。

【实验原理】水势表示水分的化学势，像电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。

植物体细胞之间，组织之间以及植物体和环境间的水分移动方向都由水势差决定。

当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，而溶液的渗透势即等于所测植物的水势。

可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液的浓度变化，然后根据公式计算渗透势。

【实验器材与试剂】1.实验材料：八角金盘、大叶黄杨等。

2.实验试剂：0.05、0.10、0.15、0.20、0.30mol·L-1蔗糖溶液、甲烯蓝溶液。

3.实验仪器：试管10支、微量注射器、镊子、打孔器、垫板。

【实验步骤】1.取干燥洁净的试管5支为甲组，标记1~5，各支中分别加入0.05~0.30mol·L-1蔗糖溶液5mL。

另取5支干燥洁净的试管为乙组，标记1'~5'，各试管中分别加入0.05~0.30mol·L-1蔗糖溶液2ml。

2.取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片（避开叶脉），混合均匀。

用镊子分别夹入10个小圆片到乙组试管中。

并使叶圆片全部浸没于溶液中。

放置约30~60min，为加速水分平衡，应经常摇动试管。

3.到时间后，在乙组试管中加入甲烯蓝溶液1~2滴，并用微量注射器取各试管糖液少许，将注射器插入对应浓度甲组试管溶液中部，小心地放出一滴蓝色溶液，并观察蓝色小液流的升降动向。

4.若小液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水），表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势；若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度。

5.计算：记录液流不动的试管中蔗糖溶液的浓度。

如无，则以小液流向上、向下移动的两个临界浓度的平均值代入下列公式计算组织的水势。

Ψw=Ψπ＝－CRTi式中：Ψw——植物组织的水势（单位MPa）Ψπ——溶液的渗透势C——等渗浓度（mol·L-1）R——气体常数（0.008314L·MPa·mol-1·K-1）T——绝对温度，即273°C+t，t为实验温度i——解离系数（蔗糖＝1，CaCl2＝2.60）【注意事项】1.所取材料部位，组织大小要一致，不要取有伤口的叶片。

2.蔗糖溶液用前要摇匀，因为时间放长的蔗糖溶液会分层，影响结果。

3.微量注射器的针头从试管抽出时要缓慢，以免溶液振动，影响蓝色液流的运动。

【思考题】1.测定同一植物上部及下部叶片的水势有何差别？2.了解测定植物组织水势的其他方法，请简单描述一种？实验二植物叶片叶绿素含量的测定【实验目的】叶绿素是光合作用的主要色素，其含量与光合作用密切相关，是反映叶片生理状态的重要指标，叶绿素含量也是指导作物栽培生产和选育作物品种的重要指标。

叶绿素a、b含量测定在植物光合生理、发育生理和抗性生理研究中有重要意义。

通过本实验，掌握叶绿素含量的测定和计算方法。

【实验原理】根据叶绿体色素提取液对可见光谱的吸收，利用分光光度计在某一特定波长下测定其光密度，即可用公式计算出提取液中各色素的含量。

根据朗伯-比尔定律，某有色溶液的光密度D与其中溶质浓度C和液层厚度L成正比，即：D=kCL式中：k为比例常数。

当溶液浓度以百分浓度为单位，液层厚度为1cm时，k为该物质的比吸收系数。

各种有色物质溶液在不同波长下的比吸收系数可通过测定已知浓度的纯物质在不同波长下的光密度而求得。

如果溶液中有数种吸光物质，则此混合液在某一波长下的总光密度等于各组分在相应波长下光密度的总和，这就是光密度的加和性。

测定叶绿体色素混合提取液中叶绿素a、b和类胡萝卜素的含量，只需测定该提取液在三个特定波长下的光密度D，并根据叶绿素a、b 及类胡萝卜素在该波长下的比吸收系数即可求出其浓度。

在测定叶绿素a、b时为了排除类胡萝卜素的干扰，所用单色光的波长选择叶绿素在红光区的最大吸收峰。

已知叶绿素a、b的80%丙酮提取液在红光区的最大吸收峰分别为663nm和645nm，又知在波长663nm下，叶绿素a、b在该溶液中的比吸收系数分别为82.04和9.27，在波长645nm 下分别为16.75和45.60，可根据加和性原则列出以下关系式：D663 = 82.04C a+9.27C b(1)D645 = 16.75C a+45.60C b(2) 式（1）、（2）中的D663和D645为叶绿素溶液在波长663nm和645nm时的光密度，C a、C b分别为叶绿素a和b的浓度，以mg·L-1为单位。

解方程组（1）、（2），得：C a = 12.72D663 – 2.59D645(3)C b = 22.88D645– 4.67D663(4)将C a与C b相加即得叶绿素总量（C T）：C T = C a + C b =20.29D645 + 8.05D663 (5)另外，由于叶绿素a、b在652nm的吸收峰相交，两者有相同的比吸收系数（均为34.5），也可以在此波长下测定一次光密度（D652）而求出叶绿素a、b总量：C T =（D652 × 1000）/ 34.5 (6)在有叶绿素存在的条件下，用分光光度法可同时测定出溶液中类胡萝卜素的含量。

Lichtenthaler等对Arnon法进行了修正，提出了80%丙酮提取液中三种色素含量的计算公式：C a = 12.21D663– 2.81D646(7)C b = 20.13D646– 5.03D663(8)C x·c= (1000D470– 3.27C a – 104C b) / 229 (9)式中：C a、C b分别为叶绿素a和b的浓度；C x·c为类胡萝卜素的总浓度；D663、D646和D470分别为叶绿体色素提取液在波长663nm、646nm和470nm下的光密度。

由于叶绿体色素在不同溶剂中的吸收光谱有差异，因此，在使用其他溶剂提取色素时，计算公式也有所不同。

叶绿素a、b在95%乙醇中最大吸收峰的波长分别为665nm和649nm，类胡萝卜素为470nm，可据此列出以下关系式：C a = 13.95D665 – 6.88D649(10)C b = 24.96D649– 7.32D665(11)C x·c= (1000D470– 2.05C a– 114.8C b) / 245 (12)最后根据下式可进一步求出植物组织中叶绿素的含量：叶绿素的含量（mg.g-1）= [叶绿素的浓度×提取液体积×稀释倍数]/样品鲜重（或干重）。

【实验器材与试剂】1.实验材料：新鲜绿色植物叶片。

2.实验试剂：95%乙醇、石英砂、碳酸钙粉末。

3.实验仪器：电子天平、研钵、试管、量筒、漏斗、分光光度计。

【实验步骤】1.取新鲜植物叶片，擦净表面污物并去掉中脉。

2.用电子天平称取0.5~1g叶片剪碎放入研钵中，加少量石英砂及碳酸钙粉末及2~3mL 95%乙醇，研磨至匀浆，再加10~15mL 95%乙醇，提取3~5min。

3.上清液用滤纸过滤到25mL容量瓶中，用少量95%乙醇冲洗研钵、研棒及残渣，最后连同残渣一起过滤（直至滤纸和残渣中无绿色为止），最后用乙醇定容至25mL，摇匀。

4.把叶绿体色素提取液（可根据溶液浓度适当稀释）倒入光径1cm的比色杯中。

以95%乙醇为空白，用分光光度计分别测定D665和D649值，并根据公式计算叶绿素a、b含量及叶绿素总含量，及每克鲜重（或干重）的含量。

【注意事项】1.光合色素在光下容易分解，操作时应在避光条件下进行，并且研磨时间应尽量短。

2.提取液不能混浊，否则要用离心机离心后才能比色。

3.注意在用不同的提取液提取光合色素时，要选用不同的吸收波长及对应的计算公式，不能混用，否则计算结果会出现严重偏差。

【思考题】1.测定叶绿素含量时为什么要选用红光区的吸收峰而不选用蓝紫光区的吸收峰？2.试比较阴生植物和阳生植物的叶绿素a、b的比值有何不同？3.用不含水的有机溶剂如无水乙醇、无水丙酮等提取植物材料特别是干材料的叶绿体色素往往效果不佳，原因何在？实验三高低温胁迫对质膜透性的影响【实验目的】掌握用电导仪法测定植物质膜透性的原理及方法；根据质膜透性大小判断植物遭受伤害的程度。

【实验原理】植物细胞质膜具有独特的选择透性，正常情况下，植物细胞与外界环境之间的一切物质交换都必须经过质膜。

测定质膜透性最常用的方法是测定细胞外液的电导率变化。

当植物处于逆境（高温、低温、干旱、盐渍、病害等）下时，不良环境因素首先作用于质膜，使质膜受到损伤，膜透性增大。

将受胁迫的植物组织浸入去离子水中，电解质外渗，水的电导率增大。

因此可用电导仪通过测定细胞外液的电导率变化来测定质膜透性的变化。

【实验器材与试剂】1.实验材料：女贞、茶梅等植物叶片。

2.实验试剂：去离子水3.实验仪器：电导仪、电子天平、打孔器、小烧杯、真空干燥器、真空泵、电炉、量筒等。

【实验步骤】1.选取植株上相同部位的叶片，用纱布擦净后分别进行以下处理：①低温处理——将带叶枝条置于-18℃冰箱中冷冻30min。

②高温处理——将带叶枝条置于50℃的人工气候箱中处理30min。

③常温处理——将带叶枝条插在水中，置于室温作为对照。

2.分别取出处理材料，吸去表面水分后用打孔器打下叶圆片20枚，放在干净烧杯中，加去离子水20mL，使叶圆片浸于水中（尽量勿使叶片叠在一起）。

3.将烧杯放入真空干燥箱中，用真空泵抽气10min，抽出细胞间隙的空气，然后缓缓放入空气，水渗入细胞间隙，叶片变成半透明状下沉（此步可省略）。

4.将烧杯取出于室温放置0.5~1h，期间注意多次摇动。

5.用电导仪测定各组的初电导率（S1）。

6.将烧杯再放入100℃沸水浴中处理15min杀死植物组织。

取出后冷却至室温，分别测定其终电导率（S2）。

同时测定去离子水的电导率作为空白电导率（S0）。

7.根据公式计算相对电导率。

相对电导率表示与质膜完全通透（细胞被煮沸杀死）相比，质膜受破坏的程度（质膜相对透性）。