2、阳性染色对照 用现有试剂和方法检测已知表达某种特 异性抗原的细胞即为阳性细胞。如检测血小板CD62P时， 可用被ADP诱导活化血小板作为CD62P检测的阳性对照细 胞。
3.阴性染色对照已知不表达某种抗原的细胞即为阴 性细胞群，如CD3/CD19双染检测健康人性细胞群（主要是NK细胞），可作阴性对照。 4. 同型对照 与染色的单克隆抗体特异性无关的免 疫球蛋白亚型，如IgG-FITC、IgG-PE
荧光能检测到单个微粒上标有荧光分子少于 <600个 (如FITC或PE)；前向角检测到小于0.3um 颗粒。 分选感兴趣的细胞 纯度达99%，收获率可达90%。
流式细胞术的应用范围
细胞大小 细胞表面分子:CD系列 细胞浆内分子：胞内细胞因子 细胞核内分子：P53 细胞功能检测:细胞周期、细胞凋亡
其他：线粒体膜电位、细胞内钙离子浓度
加OptiLyes C溶血素250ul
PBS洗一次
抗体:
上机分析
CD4-FITC/CD8-PE/CD3-PE-CY5三标抗体


CD19-PE/CD3-FITC二标抗体 CD16+56-PE/CD3-FITC二标抗体
IgG-FITC/IgG-PE/IgG-PE-CY5同型对照

淋巴细胞亚群检测临床意义：
育15-30min → 溶血素→ 室温10min → PBS洗1次
→上机分析（1% 多聚甲醛固定）。
2. 细胞浆或核内抗原标记法 收集单细胞悬(1×106)+固定剂A 去固定液 破膜剂B及抗体
室温，15 min 室温，15 min
洗涤
PBS洗涤1次
上机分析（1% 多聚甲醛固定）。
3. 细胞表面和细胞内抗原同时标记
速度快 极短时间内可分析大量细胞，每秒可检测上万 个
细胞，甚至几万个细胞。 多参数分析 可同时分析单个细胞的多种特性，获得单个细 胞多种信息，也可以根据其细胞表面标志的不同把 细胞群分为各亚群。
定性、定量分析细胞 通过荧光染色对单细胞的某些成分，如：DNA、 抗原或受体等进行定性、定量分析。 灵敏度高
参数的意义: FSC的强度与细胞的大小有关，也就是说，细胞越大， 散射光越强，细胞越小,散射光越弱; SSC对细胞膜、胞质、核膜的折射率更为敏感，可反 映细胞颗粒性程度大小。 单参数直方图X轴代表荧光或散射光的强度，Y轴代该 道所具有相同光信号细胞的频率或相对的细胞数； 双参数散点图X轴和Y轴均代表散射光或荧光的强度.
流式细胞分析中常需要两种或两种以上不 同荧光素标记的单克隆抗体进行多色分析。由 于目前使用的各种荧光染料都是宽发射光谱性 质，发射光谱范围有一定的重叠，出现结果误 差，克服这种误差的有效方法就是使用荧光补 偿。

八、数据分析
流式细胞术的目的是对我们感兴趣的细胞进行 分析，其中设门技术是流式细胞数据分析中最为独 特的技术，是指在细胞分布图中指定一个范围或一 片区域（门），对其中的细胞进行单参数或多参数 分析。设门包括线性门、矩形门、圆形门、多边形 门、任意门和四象门等。
细胞表型分析：
双色分析：FITC与PE
三色分析：双色分析+PE-CY5
四色分析：三色分析+ECD DNA含量分析： PI 凋亡与坏死分析： 凋亡用Annexin V-FITC/PI双染
四、标本的收集、单细胞悬液的制备
骨髓、外周血、细胞株、组织器官、 胸水、腹水、尿液脱落细胞等
1、骨髓及外周血细胞单细胞悬液的制备
周期分析
G0/G1 (2C)
S (2C→4C) G2/M (4C)
当人体癌变或者具有恶性潜能的癌前病变时， 在其发生、发展过程中可伴随有细胞DNA倍体及S期 的改变（异倍体） 恶性肿瘤细胞增殖周期的判断： S>10、G2/M>15或S>20、G2/M>5
白细胞分化抗原（CD分子）的命名：
1982年世界卫生组织和国际免疫学会联合会， 将所有抗体根据白细胞分化抗原反应性的类型划 分为25群，把每一群抗体称为一个分化抗体群 (Cluster of Differentiation，CD)，进行编号、 命名，即为单克隆抗体的国际命名法。由CD抗体 群识别的分化抗原就称为CD分子。目前已有339个 分化抗体群被鉴定并命名
体时，将DNA含量直
方图分为三部分，
G0/G1 (2C)
S (2C→4C)
即G0/G1、S、G2/M
三个细胞峰。
G2/M G2/M
(4C) (4C)

方法：
细胞悬液（1*106） 70%冰乙醇
4º C ，24h
离心去固定液
30min
PBS洗2次
PI
避光,30min
RNase
上机
PBS洗1次
采集10000细胞，MultiCycle软件进行细胞
100目钢筛网过滤 300目尼龙 1000r/min，5min PBS 洗2次 单细胞
5. 脱落细胞单细胞悬液的制备
包括：
尿液脱落细胞
胸水、腹水脱落细胞 冲洗液脱落细胞
收集胸水、腹水、尿液、冲洗液 沉淀 取底部10-20ml 300目尼龙滤网过滤 收集方法、沉淀时间
臵 4℃ 冰箱中 PBS洗 3 次
三、单克隆抗体标记荧光探针选择
1.了解激发光波长和发射波长
激发光波长（nm ）
异硫氰酸（FITC） 488 发射波长(nm) 525（绿）
藻红蛋白（PE）
碘化丙啶（PI） 藻红蛋白偶联物（PECY5） 藻红蛋白偶联物（PECY7） 别藻青蛋白（APC）
488
488 488 488 633
575（橙）
在流式分析中通常需要细胞膜表面和细胞 内同时标记，首先标记表面抗原，然后再对细胞 膜和核膜进行固定破膜后再标记胞内或核内抗原。 常见细胞破膜剂：
0.05%皂角素、0.1%曲拉通 (Triton X-100)、70%乙醇、
商品化固定破膜剂（A、B）。
1、空白对照
用缓冲液（PBS）代替单克隆抗体进行实验
网搓法
组织块洗去血液 收集滤液 PBS 洗2次 100目钢筛网轻搓 单细胞悬液。 研磨器研至匀浆 100目钢筛网
生理盐水
1000r/min，5min
300目尼龙网过滤
离心
研磨法
组织块洗去血液 单细胞悬液。
300目尼龙网过滤
离心
1000r/min，5min
PBS洗2次
4. 石蜡包埋组织单细胞悬液的制备
醇乙脱水： 70％→80%→90％→ 95% →100%醇乙→二甲苯→石 蜡包埋 脱蜡水化： 二甲苯脱蜡→ 100％醇乙 →90%→80%→70％→50％ →蒸馏水
石蜡包埋组织制备 单细胞悬液
石蜡包埋组织切片
乙醇，蒸馏水
二甲苯脱蜡 胰蛋白酶
1-2天
水化
组织器官
37℃，15-30min
冰PBS 网过滤 离心 悬液
骨髓及外周血都是天然的单个细胞，可直接标记， 再溶血。 单细胞的分离制备 分离液 离心 血液+生理盐水
2500r/min，20-30min
单个核细胞
单核细胞: 利用单核细胞在短时培养贴壁快 的特性（30-40min），可采用短时培 养获得较纯的单核细胞.
2、培养细胞样品的制备(贴壁细胞)
培养板 胰蛋白酶 吸去培养液
小鼠 兔抗小鼠
接抗体，只能采用此方法。
直接标记是在标记时加入连接着荧光素 的特异性抗体，该方法简单，目前广泛应用
直
标
于各实验室。
根据细胞部位的不同，可分为细胞表面和细胞内 抗
原染色，细胞内标记需要固定、破膜等步骤 1.细胞表面抗原的标记法（外周血为例 ） 全血50ul（5×105）+10ul相应抗体→避光孵
FSC
SSC
1、DNA含量分析 意义：肿瘤的早期诊断，肿瘤的良恶性判断，观察细胞的 增殖状态及细胞周期分布。 正常生物细胞，DNA含量随着细胞增殖周期时相而发 生变化。即G0/G1期（2C）、S期（2C→4C） G2/M期 （4C）。
2C→4C
2C
4C
FCM进行细胞周期DNA含量分析时，需要对 DNA进行染色，DNA染料（PI）与DNA结合具有特 异性，有一定量效关系，即DNA含量的多少与荧 光染料的结合量成正比，荧光强度与DNA吸收荧 光分子多少成正比。FCM分析一个 细胞群周期与DNA倍
37℃，室温，3-5min
PBS洗2次 含血清的培养基 单细胞悬液。
吹打
PBS洗2次
3. 组织器官单细胞悬液的制备
酶消化法
组织器官 机械法 单细胞制备仪 剪碎法 网搓法 研磨法
（1）、酶消化法
组织块洗去血液
酶 滤
37℃，15-30min
剪成小块
胰蛋白
含血清的培养基
100目钢筛网过滤
离心
300目尼龙网过
单细胞悬液
胸水、腹水：胸、腹水50-100ml，加入1000U/ml 肝
素液，臵于4℃ 冰箱中静臵 6-12h
尿 液：收集24h 尿液，臵4℃冰箱中自然沉淀 2h 冲洗液：300-500ml 生理盐水冲洗膀胱 ，冰箱内臵
6-12h
间
标
羊抗兔
五、荧光标记 主要包括间接免疫荧光染色和直接免 疫荧光染色两种方法。 间接标记是采用特异的无荧光标记的一 抗与待测标本反应后，洗去未结合抗体再加 入荧光标记的二抗，形成有荧光的抗原--抗 体--抗体复合物。其操作复杂、费时，目前 很少用。在科研中需要一些新的抗体没有直
流式细胞术实验方法及应用
科研型
分选功能 488nm激光
Our weapon：EPICS ALTRA Flow Cytosorter
四色荧光
(525、575、610
、675nm）
流式细胞仪的发展起源于细胞计数自动化的 研究。其原理是被荧光染色的单细胞或颗粒， 经过高速的液流系统形成细胞柱，排列成单细 胞依次通过流动室，在激光照射区域，携带荧 光素细胞受激发产生不同的荧光信号，这些荧 光信号可以反映细胞的生物特性。