流式细胞术实验方法及应用
原染色,细胞内标记需要固定、破膜等步骤 1.细胞表面抗原的标记法(外周血为例 ) 全血50ul(5×105)+10ul相应抗体→避光孵 育15-30min → 溶血素→ 室温10min → PBS洗1次 →上机分析(1% 多聚甲醛固定)。
2. 细胞浆或核内抗原标记法 收集单细胞悬(1×106)+固定剂A 去固定液 破膜剂B及抗体
任意门、矩形门
线性门
四象门
多重逻辑门:当一种细胞有两种以上的参数需要被 分析时,常需要设多个门,各门之间由此出现逻 辑关系,此种设门技术称为多重逻辑门或联合门。
淋巴细胞
T淋巴细胞(CD3+)
CD3+CD8(CD4+)
IFN-r
IL-4
数据显示采用的图:散点图、直方图、密度图 和二维等高图等。最常用的为单参数直方图 和双参数散点图。
室温,15 min 室温,15 min
洗涤
PBS洗涤1次
上机分析(1% 多聚甲醛固定)。 3. 细胞表面和细胞内抗原同时标记 在流式分析中通常需要细胞膜表面和细胞 内同时标记,首先标记表面抗原,然后再对细胞 膜和核膜进行固定破膜后再标记胞内或核内抗原。 常见细胞破膜剂:
0.05%皂角素、0.1%曲拉通 (Triton X-100)、70%乙醇、 商品化固定破膜剂(A、B)。
100目钢筛网过滤 1000r/min,5min PBS 洗2次
300目尼龙网 单细胞悬
5. 脱落细胞单细胞悬液的制备
包括:
尿液脱落细胞
胸水、腹水脱落细胞 冲洗液脱落细胞
收集胸水、腹水、尿液、冲洗液 沉淀 取底部10-20ml 300目尼龙滤网过滤 收集方法、沉淀时间
臵 4℃ 冰箱中 PBS洗 3 次
四色分析:三色分析+ECD DNA含量分析: PI 凋亡与坏死分析: 凋亡用Annexin V-FITC/PI双染
四、标本的收集、单细胞悬液的制备
骨髓、外周血、细胞株、组织器官、 胸水、腹水、尿液脱落细胞等
1、骨髓及外周血细胞单细胞悬液的制备
骨髓及外周血都是天然的单个细胞,可直接标记, 再溶血。 单细胞的分离制备 分离液 离心 血液+生理盐水
体时,将DNA含量直
方图分为三部分,
G0/G1 (2C)
S (2C→4C)
即G0/G1、S、G2/M
三个细胞峰。
G2/M G2/M
(4C) (4C)
方法:
细胞悬液(1*106) 70%冰乙醇
4º ,24h C
离心去固定液
30min
PBS洗2次
PI
避光,30min
RNase
上机
PBS洗1次
采集10000细胞,MultiCycle软件进行细胞
流式细胞术实验方法及应用
何玉萍
科研型
分选功能 488nm激光
Our weapon:EPICS ALTRA Flow Cytosorter
四色荧光
(525、575、610
、675nm)
一、流式细胞术的原理
流式细胞仪的发展起源于细胞计数自动化的 研究。其原理是被荧光染色的单细胞或颗粒, 经过高速的液流系统形成细胞柱,排列成单细 胞依次通过流动室,在激光照射区域,携带荧 光素细胞受激发产生不同的荧光信号,这些荧 光信号可以反映细胞的生物特性。
周期分析
G0/G1 (2C)
S (2C→4C) G2/M (4C)
当人体癌变或者具有恶性潜能的癌前病变时, 在其发生、发展过程中可伴随有细胞DNA倍体及S期 的改变(异倍体) 恶性肿瘤细胞增殖周期的判断: S>10、G2/M>15或S>20、G2/M>5
2、 淋巴细胞亚群分析
白细胞分化抗原(CD分子)的命名:
藻红蛋白(PE)
碘化丙啶(PI) 藻红蛋白偶联物(PECY5) 藻红蛋白偶联物(PECY7) 别藻青蛋白(APC)
488
488 488 488 633
575(橙)
610(红) 667(红) 767(红外) 660(红)
别藻青蛋白偶联物 (APC-CY7)
633
767(ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ外)
2. 要有高的光子产量---提高信号强度。
PBS洗一次
抗体:
上机分析
CD4-FITC/CD8-PE/CD3-PE-CY5三标抗体
CD19-PE/CD3-FITC二标抗体 CD16+56-PE/CD3-FITC二标抗体
激光
前向散射
FALS Sensor
Freq
Fluorescence
侧向散射,荧光信号
FCM的液流系统(如 何形成单个细胞流)
样本管
鞘液管
近30年来流式细胞术在我国得到很 快的发展,应用范围不断增大。目前, 流式细胞术作为一门生物检测技术广泛 应用于免疫学、血液学、肿瘤学、细胞 遗传学、细胞生物学、生物化学等临床 医学和基础医学研究领域。
生理盐水
1000r/min,5min
300目尼龙网过滤
离心
研磨法
组织块洗去血液 单细胞悬液。 研磨器研至匀浆 离心 100目钢筛网 PBS洗2次 300目尼龙网过滤
1000r/min,5min
4. 石蜡包埋组织单细胞悬液的制备
手术获得的新鲜实体组织,常要送病理石蜡包 埋处理,这些标本也可用于流式细胞术的检测。
CD3+
CD3+CD8+ CD3+CD4+
NK+/CD3-
CD(16+56)+/CD3+ (T-cell)
NK细胞: CD(16+56)+/CD3-
CD19+/CD3-
CD19+/CD3+ (T-cell)
B淋巴细胞: CD19+/CD3-
外周血淋巴细胞亚群标记方法(表面标记)
50ul+10ul相应抗体 避光孵育15min 室温10min 加OptiLyes C溶血素250ul
FSC
SSC
九、流式细胞术的应用及标记方法
1、DNA含量分析 意义:肿瘤的早期诊断,肿瘤的良恶性判断,观察细胞的 增殖状态及细胞周期分布。 正常生物细胞,DNA含量随着细胞增殖周期时相而发 生变化。即G0/G1期(2C)、S期(2C→4C) G2/M期 (4C)。
2C→4C
2C
4C
FCM进行细胞周期DNA含量分析时,需要对 DNA进行染色,DNA染料(PI)与DNA结合具有特 异性,有一定量效关系,即DNA含量的多少与荧 光染料的结合量成正比,荧光强度与DNA吸收荧 光分子多少成正比。FCM分析一个 细胞群周期与DNA倍
流式细胞结合单克隆抗体技术能准确分类 计数淋巴细胞亚群,被认为是血液中淋巴细胞 免疫表型分析的标准方法。血液淋巴细胞是一 群特异性极强的细胞,根据淋巴细胞的功能及 膜表面标志,主要分为T淋巴细胞(CD3+)、B淋 巴细胞(CD19+)、NK细胞(CD16+56+/CD3-)三个 亚群。
T淋巴细胞(CD3+) 淋巴细胞 B淋巴细胞(CD19+) NK细胞(CD16+56)+
剪成小块 PBS 洗2次
剪至浆状
制备仪
2-3min
300目尼龙网过滤
离心
剪碎法
1000r/min,5min
单细胞悬液。
吸管轻轻吹打
组织块洗去血液
100目钢筛网过滤 300目尼龙网过滤 离心 1000r/min,5min PBS 洗2次 单细胞悬液。
网搓法
组织块洗去血液 收集滤液 PBS 洗2次 100目钢筛网轻搓 单细胞悬液。
醇乙脱水: 70%→80%→90%→ 95% →100%醇乙→二甲苯→石 蜡包埋 脱蜡水化: 二甲苯脱蜡→ 100%醇乙 →90%→80%→70%→50% →蒸馏水
石蜡包埋组织制备 单细胞悬液
石蜡包埋组织切片
乙醇,蒸馏水
二甲苯脱蜡 胰蛋白酶
1-2天
水化
组织器官
37℃,15-30min
冰PBS 过滤 离心 液
1982年世界卫生组织和国际免疫学会联合会, 将所有抗体根据白细胞分化抗原反应性的类型划 分为25群,把每一群抗体称为一个分化抗体群 (Cluster of Differentiation,CD),进行编号、 命名,即为单克隆抗体的国际命名法。由CD抗体 群识别的分化抗原就称为CD分子。目前已有339个 分化抗体群被鉴定并命名
六、荧光染色对照设臵(空白对照
同型对照 )
、阳性对照、阴性对照、
1、空白对照
用缓冲液(PBS)代替单克隆抗体进行实验
2、阳性染色对照 用现有试剂和方法检测已知表达某种特 异性抗原的细胞即为阳性细胞。如检测血小板CD62P时, 可用被ADP诱导活化血小板作为CD62P检测的阳性对照细 胞。
3.阴性染色对照已知不表达某种抗原的细胞即为阴 性细胞群,如CD3/CD19双染检测健康人血液淋巴 细胞亚群时,应有一群不表达这两种抗原的双阴 性细胞群(主要是NK细胞),可作阴性对照。 4. 同型对照 与染色的单克隆抗体特异性无关的免 疫球蛋白亚型,如IgG-FITC、IgG-PE
2500r/min,20-30min
单个核细胞
单核细胞: 利用单核细胞在短时培养贴壁快 的特性(30-40min),可采用短时培 养获得较纯的单核细胞.
2、培养细胞样品的制备(贴壁细胞)
培养板
胰蛋白酶
吸去培养液
37℃,室温,3-5min
PBS洗2次
含血清的培养基
吹打
PBS洗2次
单细胞悬液。
3. 组织器官单细胞悬液的制备
抗与待测标本反应后,洗去未结合抗体再加