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2酵母蔗糖酶



1.
酶活测定 蔗糖酶将底物水解为还原糖
试剂 (均35度预 热) 酶液(mL)
1N NaOH 液(mL)
粗酶液组
测定组1 对照组1
纯酶液组
测定组2 对照组2
1.0

1.0
0.5
1.0

1.0
0.5
5%蔗糖液 (mL)
1N NaOH 液(mL)
2.0
2.0
2.0
2.0
பைடு நூலகம்35度水浴10min,自来水冷却 0.5 - 0.5 -
2、DNS法测定还原糖量
试剂 粗酶液组 测定组1 水解液 (mL) 蒸馏水 (mL) DNS液 (mL) 1 对照组1 1 纯酶液组 测定组2 1 对照组2 1
0.5
0.5
0.5
0.5
1.0
1.0
1.0
1.0
沸水浴5min,自来水冷却,稀释至10mL,以对照组调零,记 录测定组OD540nm。
实验结果
实验原理

蔗糖酶的提取过程和酶活的测定方法; 蛋白质等生物活性大分子的提取方法。 (自学)
提取工艺和酶活测定

1.
蔗糖酶
蔗糖酶的耐热温度为50度,45度以下可保持酶活不变;在 pH3.0~8.0范围内均可保持较高的酶活; 蔗糖酶的活性中心有巯基,因此在提取时应防止其被氧化, 或者加入还原剂(如Vc)保持酶活力; 酵母细胞存在两种蔗糖酶,一种在细胞壁中,一种在细胞 质内,前者活力较高,分子量较大(约270KDa),后者活 力较低,分子量约为135KDa,两种酶的底物专一性和动力 学性质十分相似,因此,本实验未区分内酶与外酶。

1.
测定酶活的原理
蔗糖酶可作用于β -1,2糖苷键,将蔗糖水解为D-葡 萄糖和D-果糖; Cu2+ 、 Zn2+ 、 Fe2+ 是其激活剂,Mn2+ 是其抑制剂。 葡萄糖和果糖具有还原性,在偏碱性条件下,可与3,5 -二硝基水杨酸共热后生成棕红色物质,在一定浓度范 围内,还原糖的量和反应液的颜色强度成正比例关系。 蔗糖酶的活力通过其水解生成的还原糖量来反映。
实验八、酵母蔗糖酶的提取和 酶活测定
实验目的

学习提取酵母蔗糖酶和测定酶活力的方法; 学习提取生物活性大分子的方法。
实验材料



材料:活性干酵母粉、石英砂; 试剂:95%冰乙醇、DNS液、PBS(pH7.2)、 5%蔗糖溶液、1N NaOH溶液; 仪器:水浴锅、离心机、722型分光光度计。
2.
3.
1.
2.
3.
4.
5.
提取酶注意事项 了解目的物的分子量、酸碱稳定性、热稳定性, 选择合适的提取条件; 提取过程中采用缓冲液系统溶解酶,并可添加 一些保护剂(如还原剂、金属螯合剂等); 提取过程一般保持低温、避免剧烈搅拌、强酸、 强碱等变性的因素; 一般先选择分辨率低处理量大的方法(如萃取、 沉淀、吸附)浓缩酶,再采用分辨率高的方法 (如离子交换层析、亲和层析、超滤)精制; 通过酶活测定,调节提取条件。

计算酶活力
将吸光值代入还原糖标准曲线,得到水解液中还原糖的毫克数
Y=0.67X+0.027
酶活力(U/mL)=还原糖毫克数×3.5(水解液体积) 蔗糖酶活力定义:在一定实验条件下,在规定时间内释放1mg 还原糖的酶量为一活力单位。

计算蔗糖酶得率
得率=纯酶液活力/粗酶液活力
思考题

简述影响蔗糖酶得率的因素。 根据蛋白质理化性质,列出蛋白质分离纯 化的主要方法。
2.
3.
提取工艺 1. 破碎酵母细胞的方法: 蔗糖酶分子量较大,一般采用研磨法彻底破碎 细胞使其释放出来,但应注意研磨过程中保持 低温防止酶失活; 或者采用自溶法(适当的酸度和温度下利用酵 母菌自身的酶系破坏细胞壁),此方法较为温 和,但是时间较长,需加入少量防腐剂,防止 过程中外界细菌污染; 化学渗透法等较温和的非机械法。 原则:低温,处理时间短,防止酶失活。

2. 选择性热变性: 根据蔗糖酶的耐热性质,将热不稳定性杂蛋白变性除去, 而蔗糖酶保持活性仍在上清液中;该法简便易行。 原则:1、选择合适的温度和加热时间,防止目的物变性, 2、溶液的蛋白质浓度要合适,防止蔗糖酶与杂蛋白共沉淀。 3. 有机溶剂沉淀法: 根据蔗糖酶的分子量和亲水性,在溶液中加入一定量的无水乙醇溶 液,利用其脱水作用,破坏了蛋白质分子表面的水化膜,使蔗糖酶 聚集沉淀下来,而与其它杂质分开。一般采用分级沉淀法摸索目的 物沉淀的条件。 原则:1、注意在低温下操作,故无水乙醇要预冷; 2、边加乙醇边搅拌溶液,防止局部乙醇过浓,导致酶变性失活; 3、离心后应迅速将上清倒出,沉淀物用缓冲液溶解,避免酶与有 机溶剂长时间接触,防止其变性。
生物活性大分子的提取方法
自学书P36-41
实验步骤


1.
2.
3.
反复冻融法破碎酵母细胞 称取1g活性干酵母泥,0.2g石英砂,置于预冷的研钵中,研 磨至粉状,加入5mLPBS(pH7.2),混合均匀,研磨5min , -20度冷冻,再研磨5min; 离心获得粗酶液 吸取约4mL酵母细胞破碎液于离心管中,8000rpm 5min,保 留上清液;——粗酶液 分离纯化获得纯酶液 吸取剩余的约2mL粗酶液于离心管中,45度水浴10min,缓慢 搅拌,迅速冰浴冷却, 12000rpm 5min,保留上清液;— —选择性热变性除去杂蛋白 将上清液置于离心管中,加入等体积预冷的无水乙醇(乙醇 终浓度约50%),-20度静置5~10min,12000rpm 5min, 保留沉淀物;——有机溶剂沉淀法获得蔗糖酶 每管加入1mLPBS(pH7.2)于沉淀物中,轻轻搅拌促溶;— —纯酶液
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